МАРКЕРЫ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ СОЕДИНИТЕЛЬНОЙ ТКАНИ ПРИ ПРОЛАПСЕ ГЕНИТАЛИЙ


https://doi.org/10.21886/2219-8075-2016-3-91-100

Полный текст:


Аннотация

Цель: расширить представления о молекулярно-биохимических изменениях при пролапсе гениталий (ПГ) на основании изучения иммуногистохимических и морфологических особенностей в соединительнотканных структурах связочного аппарата тазового дна и их обусловленность генетическими полиморфизмами MMP/TIMP.

Материалы и методы: обследованы 178 женщинв возрасте от 35 до 65 лет, 134 из них – с рецидивами ПГ (после гистерэктомии влагалищным доступом в связи с полным и неполным выпадением матки и стенок влагалища) рандомизированы по группам: I – с проявлениями недифференцированной дисплазии соединительной ткани (ДСТ) (11,7  баллов в среднем) (n=86); II – без признаков ДСТ (n=48). Контрольную III группу составили здоровые женщины без признаков ПГ (у 15 проведенагистерэктомия абдоминальным доступом по поводу гиперпластических процессов матки)(n=44). Использованы морфологический метод исследования, иммуногистохимический (метод оценки биоптатов тканей крестцово-маточных и круглых связок матки), экспрессия матриксных металлопротеиназ (ММР) и тканевых ингибиторов матриксных металлопротеиназ  (TIMP), генотипирование методом полимеразной цепной реакции полиморфизмов ММР/ TIMP.

Результаты: при морфологическом исследовании связочного аппарата женщин с ПГ выявлены значительное фиброзирование, более грубые коллагеновые септы между пучками гладкомышечных волокон и дистрофические изменения отдельных гладкомышечных клеток. В группе с ПГ и признаками ДСТ в 65% образцов выявлена диффузная атрофия, гиалиновая или муцинозная дегенерация гладкомышечной ткани и выраженный отек внеклеточного матрикса. Патобиохимию нарушений при тазовой десценции определяли дисбаланс содержания коллагенов I и III типа с преобладанием последнего, менее прочного; снижение уровня эластина на фоне его значительной фрагментации. Наибольшую выраженность тканевой деградации отмечали у женщин с ПГ и проявлениями ДСТ за счет повышенных уровней ММП-1 и -2; содержание TIMP-1 в группе было наименьшимени Ассоциативные связи с развитием ПГ были установлены у женщин с признаками ДСТ для генетических полиморфизмов: rs3918242СТгена MMP9 (0,54) (p=0,007; OR=3,2; 95% CI 1,3-7,6), rs17576AGгена ММР9 (0,62 против 0,32, p=0,01; OR=2,9; 95% CI 1,2-7,0); rs3025058 5A6Aгена ММP3 (0,52 против 0,45, p=0,009; OR=3,7; 95% CI 1,3-10,1); rs2285053 (rs2285052)СТ генаММР2(0,44 против 0,27, p=0,007; OR=3,2; 95% CI 1,3-7,5). Статистическая значимость для групп сохранялась после введения поправки на множественные сравнения.

Заключение: полученные данные позволяют раскрыть патогенетические аспекты ПГ – превалирование процессов деградации внеклеточного матрикса в условиях диспластического морфогенеза. Установлены генетические предикторы ремоделирования тазового дна с формированием его несостоятельности, позволяющие расширить спектр диагностических возможностей прогрессирования заболевания на начальных стадиях или определить риск его рецидивирования после оперативного лечения. Персонификация ведения женщин групп риска предусматривает исключение или модификацию всех предрасполагающих к развитию заболевания факторов, проведение своевременных лечебно-профилактических мероприятий.


Об авторах

М. Л. Ханзадян
Российский университет дружбы народов
Россия

Доцент кафедры акушерства, гинекологии и репродуктивной медицины ФПК МР



В. Е. Радзинский
Российский университет дружбы народов
Россия

Доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой акушерства и гинекологии с курсом перинатологии



Т. А. Демура
Первый МГМУ имени И.М. Сеченова
Россия
Доктор медицинских наук, профессор кафедры патологической анатомии им академика А.И.Струкова


А. Е. Донников
НПФ ДНК-Технология, ООО
Россия

Руководитель медицинского отдела



Список литературы

1. Радзинский В. Е. Перинеология. – Москва, 2010. – 372 с.

2. Budatha M, Roshanravan S, Zheng Q, et al. Extracellular matrix proteases contribute to progression of pelvic organ prolapse in mice and humans. J Clin Invest. 2011 May;121(5):2048-59.

3. Zong W, Stein SE, Starcher B, et al. Alteration of vaginal elastin metabolism in women with pelvic organ prolapse. Obstet Gynecol. 2010 May;115(5):953-61.

4. De Landsheere L, Munaut C, Nusgens B, et al. Histology of the vaginal wall in women with pelvic organ prolapse: a literature review. IntUrogynecol J. 2013 Dec;24(12):2011-20.

5. Slieker-ten Hove MC, Pool-Goudzwaard AL, Eijkemans MJ, et al. Prediction model and prognostic index to estimate clinically relevant pelvic organ prolapse in a general female population. IntUrogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2009 Sep;20(9):1013-21.

6. Yu HY, Yang X, Li GH. Prospective study of the impact on lower urinary tract symptoms after pelvic organ prolapse surgery. Zhonghua Fu Chan KeZaZhi. 2011 Aug;46(8):570-3.

7. Malemud CJ. Matrix metalloproteinases (MMPs) in health and disease: an overview. Front Biosci. 2006 May 1;11:1696-701.

8. Кадурина Т.И. Наследственныеколлагенопатии (клиника, диагностика, лечение и диспансеризация). СПб.: Невский диалект, 2000. – 271 с.

9. Chen B, Yeh J. Alterations in connective tissue metabolism in stress incontinence and prolapse. J Urol. 2011 Nov;186(5):1768-72.

10. Кадурина Т.И. Дисплазия соединительной ткани». Руководство для врачей. – ЭЛБИ, СПб, 2009. 704 с.

11. Yucel N, Usta A, Guzin K, et al. Immunohistochemical analysis of connective tissue in patients with pelvic organ prolapse. J MolHistol. 2013 Feb;44(1):97-102.

12. Gabriel B, Watermann D, Hancke K, et al. Increased expression of matrix metalloproteinase 2 in uterosacral ligaments is associated with pelvic organ prolapse. IntUrogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2006 Sep;17(5):478-82.

13. Abramowitch SD, Feola A, Jallah Z, et al. Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review. Eur J ObstetGynecolReprod Biol. 2009 May;144Suppl 1:S146-58.

14. Karam JA, Vazquez DV, Lin VK, et al. Elastin expression and elastic fibre width in the anterior vaginal wall of postmenopausal women with and without prolapse. BJU Int. 2007 Aug;100(2):346-50.

15. Vulic M, Strinic T, Tomic S, et al. Difference in expression of collagen type I and matrix metalloproteinase-1 in uterosacral ligaments of women with and without pelvic organ prolapse. Eur J ObstetGynecolReprod Biol. 2011 Apr;155(2):225-8.

16. Chen L, Wang T, Liu L, et al. Matrix metalloproteinase-9 -1562C/T promoter polymorphism confers risk for COPD: a meta-analysis. PLoS One. 2013;8(3):e60523.

17. Li M, Shi J, Fu L, et al. Genetic polymorphism of MMP family and coronary disease susceptibility: a meta-analysis. Gene. 2012 Mar 1;495(1):36-41.

18. Cartwright R, Kirby AC, Tikkinen KA, et al. Systematic review and metaanalysis of genetic association studies of urinary symptoms and prolapse in women. Am J Obstet Gynecol. 2015 Feb;212(2):199. e1-24.

19. Chen HY, Lin WY, Chen YH, et al. Matrix metalloproteinase-9 polymorphism and risk of pelvic organ prolapse in Taiwanese women. Eur J ObstetGynecolReprod Biol. 2010 Apr;149(2):222-4.

20. Wu JM, Visco AG, Grass EA, et al. Matrix metalloproteinase-9 genetic polymorphisms and the risk for advanced pelvic organ prolapse. Obstet Gynecol. 2012 Sep;120(3):587-93.


Дополнительные файлы

Для цитирования: Ханзадян М.Л., Радзинский В.Е., Демура Т.А., Донников А.Е. МАРКЕРЫ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ СОЕДИНИТЕЛЬНОЙ ТКАНИ ПРИ ПРОЛАПСЕ ГЕНИТАЛИЙ. Медицинский вестник Юга России. 2016;(3):91-100. https://doi.org/10.21886/2219-8075-2016-3-91-100

For citation: Khanzadyan M.L., Radzinskiy V.E., Demura T.A., Donnikov A.Е. MARKERS OF CONNECTIVE TISSUE REMODELING IN GENITAL PROLAPSE. Medical Herald of the South of Russia. 2016;(3):91-100. (In Russ.) https://doi.org/10.21886/2219-8075-2016-3-91-100

Просмотров: 145

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2219-8075 (Print)
ISSN 2618-7876 (Online)