Перейти к:
Роль нетоза в патогенезе заболеваний органов дыхания
https://doi.org/10.21886/2219-8075-2026-17-3-43-50
Аннотация
Нейтрофильные внеклеточные ловушки (НВЛ) — сетчатые структуры из ДНК и антимикробных белков, высвобождаемые активированными нейтрофилами в процессе нетоза. Целью обзора является систематический анализ роли нетоза в патогенезе респираторных заболеваний и оценка потенциальных терапевтических стратегий. Рассмотрены механизмы нетоза (литический и витальный нетоз), двойственная функция НВЛ — от антимикробной защиты до медиатора тканевого повреждения. Особое внимание уделено нетозу при COVID-19, бронхиальной астме (в особенности нейтрофильные фенотипы), хронической обструктивной болезни легких и муковисцидозе. Обсуждаются подходы к модуляции и ингибированию нетоза: ДНКаза I, ингибиторы протеаз, ингибиторы фосфодиэстеразы 4 типа, дипептидилпептидазы-1, биологическая терапия. Анализ 55 публикаций (PubMed, e-Library) подтверждает, что нетоз — ключевое патогенетическое звено, а не только биомаркер. Это делает НВЛ перспективной мишенью для лечения, несмотря на гетерогенность заболеваний и сложность регуляции нетоза. Проанализированы результаты исследований по обнаружению, визуализации нейтрофильных внеклеточных ловушек, механизмам ловушкообразования в патогенезе заболеваний органов дыхания, моделированию на лабораторных животных патологических состояний с последующим применением таргетной терапии в отношении компонентов НВЛ.
Ключевые слова
Для цитирования:
Горблянский Ю.Ю., Авакянц Ф.А., Шапкина М.А., Лукашевич М.Г. Роль нетоза в патогенезе заболеваний органов дыхания. Медицинский вестник Юга России. 2026;17(3):43-50. https://doi.org/10.21886/2219-8075-2026-17-3-43-50
For citation:
Gorblyansky Yu.Yu., Avakyants F.A., Shapkina M.A., Lukashevich M.G. The role of netosis in the pathogenesis of respiratory diseases. Medical Herald of the South of Russia. 2026;17(3):43-50. (In Russ.) https://doi.org/10.21886/2219-8075-2026-17-3-43-50
Введение
Хронические воспалительные заболевания органов дыхания (бронхиальная астма — БА, хроническая обструктивная болезнь легких — ХОБЛ, муковисцидоз — МВ) остаются ведущими причинами заболеваемости и смертности. В основе патогенеза — нарушение иммунного ответа, ключевые эффекторы которого — нейтрофилы. Традиционно рассматриваемые как первая линия защиты, при определенных условиях они усугубляют повреждение тканей [1]. Открытие в 2004 г. нетоза изменило понимание роли нейтрофилов в воспалении [2].
Продукт нетоза — нейтрофильные внеклеточные ловушки (Neutrophil Extracellular Traps, NETs или НВЛ) — внеклеточные сети из деконденсированной ДНК, гистонов и гранулярных белков [2][3]. При острой инфекции НВЛ нейтрализуют патогены. При хроническом воспалении избыточное ловушкообразование повреждает эпителий, повышает вязкость секрета, активирует тромбообразование и поддерживает воспаление [3].
Стандартная терапия часто неэффективна при нейтрофильных фенотипах. Селективная модуляция нетоза открывает перспективы лечения респираторных заболеваний.
Поиск литературы проводился в базах данных PubMed и eLibrary за период с 2006 по август 2025 г., включающий 110 источников. Основу анализа составили научные публикации за последние 5 лет (2020–2025 гг.). В качестве исключения в обзор были включены основополагающие работы, датированные 2006–2019 гг. и имеющие принципиальное значение для понимания механизмов образования нейтрофильных внеклеточных ловушек, эволюции представлений о нетозе и становления данного направления в патофизиологии респираторных заболеваний. Критериями включения служили оригинальные исследования, обзоры и метаанализы на русском и английском языках; критериями исключения — тезисы конференций, диссертации, статьи без полнотекстового доступа. Поиск осуществлялся по ключевым словам: «нейтрофильные внеклеточные ловушки», «нетоз», «neutrophil extracellular traps», «NETosis», «нейтрофилы», «респираторные заболевания», «таргетная терапия». После окончательного отбора источников литературы в анализ включено 55 источников.
Общая характеристика и механизм нетоза
Основная клетка, реализующая механизм нетоза — нейтрофильный гранулоцит. Нейтрофил — это полиморфноядерный лейкоцит миелоидного ряда, представляющий собой основной эффектор врождённого клеточного иммунитета; характеризуется коротким жизненным циклом. Нейтрофилы реализуют антимикробную защиту через дегрануляцию, фагоцитоз и нетоз — процесс выброса внеклеточных сетчатых структур, состоящих из деконденсированной ДНК, гистонов и гранулярных белков: нейтрофильной эластазы (НЭ), миелопероксидазы (МПО), протеиназы 3 [4][5][6].
Ультраструктурно НВЛ представляют собой филаменты с глобулярными доменами, содержащими гранулярные белки [4]. При активации in vitro объём сетеподобной ловушки [1][2], может превышать клеточный в 10–15 раз, полностью заполняя альвеолярное пространство [4].
Образование НВЛ протекает по двум основным путям. Литический (суицидальный, классический) нетоз завершается гибелью нейтрофила и длится от 2 до 4 часов [7][8][9]. Мощным индуктором in vitro является форбол-12-миристат-13-ацетат (ФМА), активирующий протеинкиназу C и вызывающий потерю сегментации ядра, деконденсацию хроматина и разрыв ядерной и плазматической мембран [7][8][9]. Запуск суицидального нетоза сопровождается активацией НАДФН-оксидазы, способствуя генерации активных форм кислорода (АФК) [10]. АФК обеспечивают транслокацию НЭ и МПО в ядро, где они расщепляют гистоны и усиливают их деконденсацию; параллельно пептидиларгининдезиминаза 4 (ПАД4) цитруллинирует гистон H3, ослабляя его связь с ДНК, а газдермин D формирует поры в мембранах, вызывая лизис клетки [11]. Нелитический (витальный) нетоз развивается за 5–60 минут без гибели клетки. Хроматин и белки секретируются экзоцитозом в виде везикул, при этом нейтрофил сохраняет способность к хемотаксису и фагоцитозу [12][13]. Этот путь наблюдается при взаимодействии с активированными тромбоцитами или при инфекции, вызванной S. aureus и C. albicans [7][8]. Оба пути требуют адгезии нейтрофила к субстрату через интегрины, что объясняет отсутствие спонтанного образования НВЛ в кровотоке. Также описан митохондриальный нетоз — вариант витального пути с выделением митохондриальной ДНК [9].
Молекулярное распознавание патогенов при нетозе опосредовано преимущественно толл-подобными рецепторами (ТПР или Toll-like receptors, TLR): ТПР2 активируются пептидогликанами грамположительных бактерий и компонентами грибов, ТПР4 — липополисахаридами (ЛПС) грамотрицательных бактерий [7][9]. Их стимуляция запускает сигнальные каскады (PKC, Src-киназы, Ras/Raf/MEK/ERK) [14]. Клинически значимо, что полиморфизмы генов ТПР1 и ТПР4, ассоциированных со сниженной активностью нетоза, коррелируют с повышенной смертностью при пневмонии [15].
Регуляция нетоза зависит от множества триггеров. Ключевыми индукторами образования НВЛ могут быть инфекционные (бактериальные, вирусные и грибковые) и неинфекционные (химические митогены, аутоиммунные и иммунные, онкологические и другие — моноурат натрия при подагре, сигаретный дым) агенты [5][7][8][9].
Нетоз реализует две биологические стратегии. С одной стороны, НВЛ эффективно улавливают крупные патогены, например, грибковые гифы. Мощное микробицидное действие обеспечивается за счёт цитруллинированных гистонов и НЭ, МПО, АФК, ДНК [4][9].
С другой стороны, при хроническом воспалении компоненты НВЛ становятся источником молекулярных паттернов, связанных с повреждением (Damage-Associated Molecular Patterns, DAMPs). Данные молекулы активируют cGAS–STING-путь, повышают проницаемость эндотелия и способствуют развитию иммунотромбоза — микротромбов в капиллярах лёгких при острых респираторных дистресс-синдромах [7][9]. Соответственно, повышенные уровни цитруллинированного гистона H3 (CitH3), внеклеточной ДНК и комплексов миелопероксидаза–ДНК (МПО–ДНК) положительно коррелируют с тяжестью таких заболеваний, как астма, ХОБЛ, ОРДС и COVID-19 [7][8].
Некоторые патогены выработали механизмы эвазии от НВЛ («ускользания от распознавания»). Streptococcus pneumoniae, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa продуцируют ДНКазы, расщепляющие ДНК-остов ловушек и позволяющие микроорганизмам «вырываться» из сети. Bordetella pertussis подавляет нетоз путём повышения внутриклеточного уровня циклического АМФ (цАМФ). Aspergillus fumigatus маскируется от распознавания с помощью гидрофобина RodA, нейтрализующего действие НВЛ [5][9].
Отдельные исследования показывают, что компенсаторные кислородзависимые механизмы активируются при воздействии бактерий даже в больших концентрациях. При воздействии новыми классами соединений, например, наночастицами магнетита (НЧМ) в сублетальных концентрациях происходил «срыв» работы НАДФН-оксидазы, но активность МПО сохранялась. Это указывает на сложность регуляции «дыхательного взрыва» в нейтрофилах и подтверждает двойственность нетоза [16].
Микроскопические методы выявления НВЛ в научных и клинических целях
Для изучения морфологии предпочтительны суспензии из бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ) или периферической крови [5]. Методы: световая, флуоресцентная, электронная микроскопия. При классическом нетозе сканирующая электронная микроскопия (СЭМ) выявляет разветвлённые ДНК-нити, при витальном — «бусы на нити». Флуоресцентная микроскопия (антитела к МПО, CitH3), осуществляемая иммуногистохимическим методом, различает компоненты ловушек [4]. Для клинических лабораторий доступен метод световой микроскопии с двойным окрашиванием: гексаазотированный фуксин выявляет НЭ, метиловый зелёный — ДНК [17][18].
Нетоз в патогенезе заболеваний лёгких
Механизм нетоза описан как при острых, так и при хронических состояниях лёгких, особенно при тяжёлом повреждении паренхимы, сопровождающимся массивной нейтрофильной инфильтрацией и деструкцией альвеолярно-капиллярного барьера. Интерес к этой форме иммунного ответа резко возрос в период пандемии COVID-19, когда было доказано, что чрезмерный нетоз способствует развитию микротромбозов, «цитокинового шторма» и прогрессированию острого респираторного дистресс-синдрома (ОРДС), выступая не только как защитная реакция, но и как центральное звено патогенеза.
При COVID-19 инфекция SARS-CoV-2 напрямую активирует нетоз через повышение АФК и путь протеинкиназы C-β (ПКC-β) [19][20]. ЛПС-индуцированный нетоз подавляется ингибитором ПКC-β рубоксистаурином in vitro без угнетения фагоцитоза, что открывает терапевтические перспективы [20]. Уровни маркеров нетоза (внеклеточная ДНК, комплексы МПО-ДНК, CitH3) положительно коррелируют с нейтрофилезом, D-димером и тяжестью заболевания, включая риск ОРДС и летальный исход [21].
Частной моделью ОРДС является синдром TRALI («острое повреждение лёгких, связанное с трансфузией»), сопровождающийся массивной инфильтрацией нейтрофилов и ловушкообразованием [22]. Критическую роль играет взаимодействие нейтрофилов и тромбоцитов, создающее порочный круг иммунотромбоза [23]. Экспериментальное блокирование компонентов НВЛ (ДНКаза I, антигистоновые антитела) или ингибирование активации тромбоцитов уменьшает отёк лёгких и смертность [24].
При нейтрофильной бронхиальной астме (не-Th2-астме, стероидорезистентной, ассоциированной с ожирением) центральным звеном является нетоз, способствующий повреждению дыхательных путей и нарушению иммунной регуляции.
Индукция нетоза запускается ЛПС через активацию TПР4 и транскрипцию ИЛ-1β, ФНО-α, CXCL8 [25][26]. ИЛ-8 через рецептор CXCR2 инициирует нетоз и накопление нейтрофилов [27]. НВЛ активируют NLRP3-инфламмасому, усиливая созревание ИЛ-1β и продукцию ИЛ-17A [26]. ИЛ-17A стимулирует секрецию CXCL8, замыкая «порочный круг», и индуцирует высвобождение НЭ и матриксной металлопротеиназы-9 (ММП-9), вызывая ремоделирование [26].
Сигаретный дым усиливает инфильтрацию и стимулирует нетоз через ИЛ-33/ST2 (аутофагия, mTOR–Hif-1α) и снижение ИЛ-35 (ось gp130/STAT3, ферроптоз) [28][29][30]. Воспаление устойчиво к глюкокортикостероидам (ГКС): они подавляют апоптоз нейтрофилов, увеличивая выживаемость и потенциал к нетозу [26][30].
При астме, ассоциированной с ожирением, пальмитиновая кислота, резистин и лептин активируют ТПР4, запуская синтез ИЛ-1β и ИЛ-18 [25]. Цитокины стимулируют ILC3 (лимфоидные клетки врождённого иммунитета 3-го типа) и Th17-клетки (Т-хелперы 17) к продукции ИЛ-17A. Отмечено повышение маркеров нейтрофилов (Gr-1) и НВЛ, коррелирующее с гиперреактивностью [25].
Критический этап — цитруллинирование гистонов. При тяжёлой астме повышены уровни ПАД4 и CitH3 [31][32]. Симвастатин подавляет экспрессию ПАД4, снижая образование НВЛ [31].
НВЛ оказывают цитотоксичность через повреждение мембран гистонами, активируют макрофаги M1, а также индуцируют экспрессию тимусного стромального лимфопоэтина (TSLP), матриксной металлоппротеиназы-9 (ММП-9), фактора роста эндотелия сосудов (VEGF) [28][33].
Разработаны следующие терапевтические стратегии. Ингибирование ПАД4 (Cl-amidin, симвастатин, ингибиторы MBD2 и JAK2) снижает образование НВЛ [31][32]. Блокада ИЛ-33 (sST2) подавляет нетоз при астме, индуцированной дымом [28]; экзогенный ИЛ-35 восстанавливает баланс Th17/Treg [29]. Инволюкрасин B ингибирует сигнальный путь при астме, связанной с ожирением [25]. Антагонисты CXCR2 перспективны для лечения курильщиков, но на данный момент препараты не одобрены для широкого клинического применения [30].
Персонализированный подход потребует идентификации «нетоз-доминантного» эндофенотипа по маркерам (CitH3, комплексы МПО–ДНК).
Хроническая обструктивная болезнь лёгких (ХОБЛ) — хроническое воспалительное заболевание с необратимым ограничением воздушного потока [34][35][36]. Диагностируется при наличии одышки, хронического кашля и факторов риска (курение) [37]. Патогенез обусловлен воздействием дыма, вызывающего нейтрофильное воспаление — ключевой драйвер повреждения [35][36].
Роль нетоза преимущественно негативна. Уровень НВЛ в мокроте коррелирует с тяжестью, функцией лёгких и неэозинофильными обострениями (Haemophilus influenzae) [35]. НВЛ подавляют фагоцитоз, объясняя рецидивирующие инфекции [35]. Повреждение реализуется через действие протеаз: разрушают альвеолы и стимулируют гиперсекрецию слизи [38][39]. Нейтрофилёз в крови и БАЛ связан с летальностью [40]. Чрезмерная активность нейтрофилов способствует ремоделированию и обострениям [35][36].
Выделяют следующие фенотипы: Тh2 (алармины) и нейтрофильный (устойчив к ГКС, цитокины: ИЛ-8, ФНО-α, ИЛ-17, ИЛ-23) [34].
Пиоглитазон и розиглитазон проявляют высокое сродство к ключевым маркерам нетоза при обострениях ХОБЛ, вызванных P. aeruginosa: азуроцидину 1 (антимикробный хемотаксический белок гранул нейтрофилов), миелопероксидазе (фермент, генерирующий бактерицидные АФК) и резистину (провоспалительный цитокин с метаболической активностью), экспрессия которых коррелирует с выраженностью инфекционного процесса [41]. Moraxella osloensis поддерживает воспаление и усиленное образование НВЛ через активацию TLR4, что также обусловливает тяжесть заболевания [42].
Муковисцидоз (МВ) — ведущая причина развития бронхоэктазов, характеризующихся тяжёлым хроническим гнойно-воспалительным поражением дыхательных путей. В основе дисфункция белка CFTR (трансмембранного регулятора), кодирующего хлоридно-бикарбонатный канал [43]. Однако прогрессирование заболевания обусловлено не генетическим дефектом, а его следствием — воспалением. Нарушение ионного транспорта приводит к снижению мукоцилиарного клиренса и персистенции бактериальной инфекции [35][43][44][45][46].
Протеомика мокроты показывает корреляцию маркеров нетоза (НЭ, МПО, CitH3, ДНК) с тяжестью и ответом на терапию [47].
При МВ колонизация респираторного тракта P. aeruginosa ухудшает функцию дыхания [35][45]. Дыхательные пути инфильтрированы нейтрофилами [44][45][46][48][49][50]. Нейтрофилы не контролируют инфекцию из-за дисфункции и прибегают к нетозу [35][43][44]. Уровни НВЛ коррелируют с медиаторами (IL-8, НЭ) и тяжестью заболевания [35][44][51]. Эффективность НВЛ ограничена: P. aeruginosa выработала механизмы уклонения (биопленки, сиаловые кислоты) [35], которые обеспечивают толерантность к НВЛ. Избыточное ловушкообразование усугубляет обструкцию вследствие поддержания воспаления [35][43][44][51].
Стратегии таргетного лечения, подавляющего нетоз и повреждающее действие компонентов НВЛ
Ингибиторы протеаз (ингибиторы нейтрофильной эластазы)
НЭ способствует тканевому повреждению, гиперреактивности дыхательных путей, ремоделированию эпителия и формированию НВЛ. Несмотря на многообещающие данные доклинических исследований, клинические испытания прямых ингибиторов НЭ (AZD9668, BAY 85-8501) при МВ, ХОБЛ и бронхоэктазах не продемонстрировали значимого улучшения лабораторной или клинической динамики [52]. Это свидетельствует о том, что изолированное подавление внеклеточной НЭ недостаточно для контроля сложного воспалительного каскада данных нозологий.
Дезоксирибонуклеаза I (ДНКаза I)
ДНКазное лечение направлено на деградацию внеклеточной ДНК, которая служит «каркасом» НВЛ и способствует повышению вязкости бронхиального секрета. ДНКаза I обладает благоприятным профилем безопасности и рассматривается как терапевтический агент при заболеваниях дыхательной системы, ассоциированных с нетозом. При ОРДС (включая TRALI, VILI, сепсис- и SARS-CoV-2-индуцированные формы [21]) она снижает накопление НВЛ, нейтрофильную инфильтрацию, повреждение лёгких и смертность в экспериментальных моделях [24]. На молекулярном уровне терапия сопровождалась снижением активности МПО, уровней CitH3 и НЭ, уменьшением концентраций провоспалительных цитокинов (ИЛ-1β, ИЛ-6 и ФНО-α) [24]. Однако действие ДНКазы I ограничено: препарат не устраняет полностью белковые компоненты НВЛ. В некоторых исследованиях ДНКаза I не оказывала влияния на уровень цитокинов, а также было установлено, что она обладает коротким периодом полураспада, затрудняющим поддержание её терапевтической концентрации в системном кровотоке.
Ингаляционная терапия дорназой альфа (рекомбинантная ДНКаза I) при МВ расщепляет внеклеточную ДНК, уменьшая вязкость мокроты и риск обострений. Лечение снижает уровень НВЛ и их провоспалительный потенциал, что указывает на противовоспалительную роль препарата помимо муколитического эффекта [44]. Однако при бронхоэктазах наблюдается отрицательная динамика: распад НВЛ сопровождается высвобождением активных протеаз (НЭ, протеаза 3, катепсин G), усугубляющим тканевое повреждение [52].
Дальнейшие исследования должны быть направлены на оптимизацию фармакокинетики, а также на комбинированные подходы, сочетающие деградацию ДНК-остова НВЛ с ингибированием протеаз нетоза.
Ингибиторы фосфодиэстеразы 4 типа (ФДЭ4)
Рофлумиласт эффективен при МВ и ХОБЛ. Препарат подавляет ключевые звенья нетоза in vitro и in vivo. Блокада ФДЭ4 ограничивает высвобождение свободной ДНК и снижает уровень CitH3 за счёт подавления активности ПАД4, сохраняя целостность нейтрофилов и не нарушая клиренс бактерий. В модели хронической инфекции P. aeruginosa у мышей отмечено уменьшение нейтрофильного воспаления [53]. При ХОБЛ рофлумиласт одобрен для снижения риска обострений: терапевтический эффект опосредован повышением внутриклеточного цАМФ, что подавляет активацию иммунных клеток и высвобождение провоспалительных медиаторов. Однако клиническое применение ограничено побочными эффектами системного действия.
Двойственная роль нетоза — защитная при острой инфекции и патогенная при избыточной активации — определяет перспективные направления терапии. ДНКаза I, ингибиторы ПАД4 (Cl-amidin, GSK484) и селективные ингибиторы НЭ (сивелестат) снижают воспаление и улучшают оксигенацию в моделях острых лёгочных повреждений [7]. Большинство исследований проводится in vitro с использованием нефизиологических стимулов (ФМА) [8], и дальнейшие работы необходимы для верификации механизмов нетоза в условиях, имитирующих патофизиологию человека.
Ингибитор дипептидилпептидазы 1 (ДПП-1)
Новый препарат бренсокатиб показал эффективность в отношении нейтрофильного воспаления при бронхоэктазах [54]. Бренсокатиб — пероральный обратимый ингибитор дипептидилпептидазы-1 (ДПП-1), подавляющий активацию сериновых протеаз нейтрофилов. Уникальная способность бренсокатиба воздействовать на нейтрофильную активность может послужить основой для разработки подходов к изучению роли нетоза в прогрессировании заболевания и стратегий лечения.
Биологическая терапия
Гуманизированное моноклональное антитело экулизумаб ингибирует протеолитическое расщепление компонента комплемента C5, предотвращая образование анафилатоксина C5a, и блокирует формирование мембраноатакующего комплекса. Данные эффекты предотвращают высвобождение компонентов НВЛ. Препарат не применяется в рутинной практике для лечения респираторных заболеваний, но его механизм действия представляет значительный научный интерес и требует изучения для разработки таргетных стратегий модуляции НВЛ-опосредованного воспаления при патологии дыхательной системы [55].
Заключение
Физиологический нетоз выполняет защитную функцию, обеспечивая захват патогенов и предотвращение их диссеминации, однако избыточная активация процесса способствует тканевому повреждению, ремоделированию дыхательных путей и поддержанию воспаления. Патогенетическая значимость подтверждена при COVID-19 и ОРДС (микротромбозы, «цитокиновый шторм»), а также при нейтрофильных фенотипах БА, ХОБЛ и МВ, где активность коррелирует с тяжестью и стероидорезистентностью. Регуляция определяется различными сигнальными путями и цитокинами. Перспективные стратегии: ингибиторы ПАД4, ДНКаза I, ингибиторы ФДЭ4 и ДПП-1, биологическая терапия. Несмотря на результаты in vitro, многие препараты не доказали эффективности у пациентов из-за гетерогенности эндофенотипов. Необходима персонализация лечения с выявлением «нетоз-доминантного» профиля по маркерам НВЛ. Нетоз остается центральным регуляторным звеном воспаления и перспективной мишенью для таргетной терапии.
Список литературы
1. Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю., Рыжкова А.И., Маркова В.А., Васильева Н.А. Нейтрофильные ловушки: методы определения, биологическая роль. Медицинская наука и образование Урала. 2009;10(3):10-11.
2. Долгушин И.И., Шишкова Ю.С., Савочкина А.Ю. Методы обнаружения нейтрофильных ловушек. Аллергология и иммунология. 2009;10(4):458-462.
3. Никольский А.А., Шиловский И.П., Воробьева Н.В., Юмашев К.В., Пасихов Г.Б., и др. Влияние интерлейкина-37 на процесс НЕТоза у нейтрофилов человека in vitro. Иммунология. 2024;45(6):701-709.
4. Плескова С.Н., Горшкова Е.Н., Боряков А.В., Крюков Р.Н. Морфологические особенности быстрого и классического нетоза. Цитология. 2019;61(9):704-712.
5. King PT, Dousha L. Neutrophil Extracellular Traps and Respiratory Disease. J Clin Med. 2024;13(8):2390. https://doi.org/10.3390/jcm13082390
6. Воробьева Н.В. Участие нерецепторных тирозинкиназ Src-семейства в образовании нейтрофильных внеклеточных ловушек. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2023;78(1):11-16.
7. Xuan N, Zhao J, Kang Z, Cui W, Tian BP. Neutrophil extracellular traps and their implications in airway inflammatory diseases. Front Med (Lausanne). 2024;10:1331000. https://doi.org/10.3389/fmed.2023.1331000
8. Poto R, Shamji M, Marone G, Durham SR, Scadding GW, Varricchi G. Neutrophil Extracellular Traps in Asthma: Friends or Foes? Cells. 2022;11(21):3521. https://doi.org/10.3390/cells11213521
9. Андрюков Б.Г., Сомова Л.М., Дробот Е.И., Матосова Е.В. Защитные стратегии нейтрофильных гранулоцитов от патогенных бактерий. Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2017;(1):4-18.
10. Шустова С.А., Мирошкина Т.А. Защитные механизмы легких. Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. 2020;28(4):567-577.
11. Коротина О.Л., Генералов И.И. Нейтрофильные внеклеточные ловушки: механизмы образования, функции. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2012;(4):23-32.
12. Keir HR, Richardson H, Fillmore C, Shoemark A, Lazaar AL, et al. CXCL-8-dependent and -independent neutrophil activation in COPD: experiences from a pilot study of the CXCR2 antagonist danirixin. ERJ Open Res. 2020;6(4):00583-2020. https://doi.org/10.1183/23120541.00583-2020
13. Jo A, Kim DW. Neutrophil Extracellular Traps in Airway Diseases: Pathological Roles and Therapeutic Implications. Int J Mol Sci. 2023;24(5):5034. https://doi.org/10.3390/ijms24055034
14. Zhao J, Zhen N, Zhou Q, Lou J, Cui W, et al. NETs Promote Inflammatory Injury by Activating cGAS-STING Pathway in Acute Lung Injury. Int J Mol Sci. 2023;24(6):5125. https://doi.org/10.3390/ijms24065125
15. Karnaushkina MA, Guryev AS, Mironov KO, Dunaeva EA, Korchagin VI, et al. Associations of Toll-like Receptor Gene Polymorphisms with NETosis Activity as Prognostic Criteria for the Severity of Pneumonia. Sovrem Tekhnologii Med. 2021;13(3):47-53. https://doi.org/10.17691/stm2021.13.3.06
16. Плескова С.Н., Михеева Э.Р., Разумкова Е.В., Горностаева Е.Е. Влияние наночастиц магнетита и бактерий на активность НАДФН-оксидазы и миелопероксидазы нейтрофильных гранулоцитов крови человека. Цитология. 2017;59(12):867-873.
17. Генералов С.И., Ищенко О.В., Сушкова С.А., Генералов И.И. Оценка ловушкообразования нейтрофилами с использованием гексаазотированного фуксина и определение абзимной активности иммуноглобулинов классов А и М у пациентов с бронхиальной астмой и ХОБЛ. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2021;(4):34-41.
18. Генералов С.И., Ищенко О.В., Коневалова Н.Ю., Фролова А.В., Жерулик С.В., и др. Метод определения нейтрофилов и нейтрофильных внеклеточных ловушек в биологических жидкостях с помощью двойного окрашивания. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2020;(3):21-29.
19. Zhang R, Sun C, Han Y, Huang L, Sheng H, et al. Neutrophil autophagy and NETosis in COVID-19: perspectives. Autophagy. 2023;19(3):758-767. https://doi.org/10.1080/15548627.2022.2099206
20. Dowey R, Cole J, Thompson AAR, Hull RC, Huang C, et al. Enhanced neutrophil extracellular trap formation in COVID-19 is inhibited by the protein kinase C inhibitor ruboxistaurin. ERJ Open Res. 2022;8(2):00596-2021. https://doi.org/10.1183/23120541.00596-2021
21. Scozzi D, Liao F, Krupnick AS, Kreisel D, Gelman AE. The role of neutrophil extracellular traps in acute lung injury. Front Immunol. 2022;13:953195. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.953195
22. Moore SB. Transfusion-related acute lung injury (TRALI): clinical presentation, treatment, and prognosis. Crit Care Med. 2006;34(5 Suppl):S114-7. https://doi.org/10.1097/01.CCM.0000214312.20718.3E
23. Caudrillier A, Kessenbrock K, Gilliss BM, Nguyen JX, Marques MB, et al. Platelets induce neutrophil extracellular traps in transfusion-related acute lung injury. J Clin Invest. 2012;122(7):2661-2671. https://doi.org/10.1172/JCI61303
24. Zhou X, Jin J, Lv T, Song Y. A Narrative Review: The Role of NETs in Acute Respiratory Distress Syndrome/Acute Lung Injury. Int J Mol Sci. 2024;25(3):1464. https://doi.org/10.3390/ijms25031464
25. Yang Z, Li X, Wei L, Bao L, Hu H, et al. Involucrasin B suppresses airway inflammation in obese asthma by inhibiting the TLR4-NF-κB-NLRP3 pathway. Phytomedicine. 2024;132:155850. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2024.155850
26. Li Y, Yang T, Jiang B. Neutrophil and neutrophil extracellular trap involvement in neutrophilic asthma: A review. Medicine (Baltimore). 2024;103(34):e39342. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000039342
27. Старостин Д.О., Долгих В.Т., Кузовлев А.Н. Нейтрофилы как важнейшие факторы неспецифической резистентности организма. Клиническая патофизиология. 2023;29(1):28-45.
28. Liu J, Tao P, Su B, Zheng L, Lin Y, et al. Interleukin-33 modulates NET formation via an autophagy-dependent manner to promote neutrophilic inflammation in cigarette smoke-exposure asthma. J Hazard Mater. 2025;487:137257. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2025.137257
29. Tao P, Su B, Mao X, Lin Y, Zheng L, et al. Interleukin-35 inhibits NETs to ameliorate Th17/Treg immune imbalance during the exacerbation of cigarette smoke exposed-asthma via gp130/STAT3/ferroptosis axis. Redox Biol. 2025;82:103594. https://doi.org/10.1016/j.redox.2025.103594
30. Uddin M, Watz H, Malmgren A, Pedersen F. NETopathic Inflammation in Chronic Obstructive Pulmonary Disease and Severe Asthma. Front Immunol. 2019;10:47. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00047
31. Chen YR, Xiang XD, Sun F, Xiao BW, Yan MY, et al. Simvastatin Reduces NETosis to Attenuate Severe Asthma by Inhibiting PAD4 Expression. Oxid Med Cell Longev. 2023;2023:1493684. https://doi.org/10.1155/2023/1493684
32. Peng B, Yan MY, Chen YR, Sun F, Xiang XD, Liu D. The methyl-CpG binding domain 2 regulates peptidylarginine deiminase 4 expression and promotes neutrophil extracellular trap formation via the Janus kinase 2 signaling pathway in experimental severe asthma. Ann Med. 2025;57(1):2458207. https://doi.org/10.1080/07853890.2025.2458207
33. Chen F, Yu M, Zhong Y, Wang L, Huang H. Characteristics and Role of Neutrophil Extracellular Traps in Asthma. Inflammation. 2022;45(1):6-13. https://doi.org/10.1007/s10753-021-01526-8
34. Lange P, Ahmed E, Lahmar ZM, Martinez FJ, Bourdin A. Natural history and mechanisms of COPD. Respirology. 2021;26(4):298-321. https://doi.org/10.1111/resp.14007
35. Block H, Zarbock A. A Fragile Balance: Does Neutrophil Extracellular Trap Formation Drive Pulmonary Disease Progression? Cells. 2021;10(8):1932. https://doi.org/10.3390/cells10081932
36. Liao SX, Wang YW, Sun PP, Xu Y, Wang TH. Prospects of neutrophilic implications against pathobiology of chronic obstructive pulmonary disease: Pharmacological insights and technological advances. Int Immunopharmacol. 2025;144:113634. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2024.113634
37. Buttery SC, Zysman M, Vikjord SAA, Hopkinson NS, Jenkins C, Vanfleteren LEGW. Contemporary perspectives in COPD: Patient burden, the role of gender and trajectories of multimorbidity. Respirology. 2021;26(5):419-441. https://doi.org/10.1111/resp.14032
38. Федосеев Г.Б., Трофимов Б.И., Рогачева Н.Н., Разумовская Т.С. Роль нейтрофилов и бактериальной инфекции респираторного тракта у больных бронхиальной астмой и хронической обструктивной болезнью легких. Российский аллергологический журнал. 2011;(2):34-43.
39. Schioppa T, Nguyen HO, Salvi V, Maugeri N, Facchinetti F, et al. The PDE4 Inhibitor Tanimilast Restrains the Tissue-Damaging Properties of Human Neutrophils. Int J Mol Sci. 2022;23(9):4982. https://doi.org/10.3390/ijms23094982
40. Карзакова Л.М., Алексеева Е.П., Кудряшов С.И., Журавлева Н.В., Ухтерова Н.Д., Андреева Н.П. Роль иммунологических факторов в неблагоприятном исходе хронической обструктивной болезни легких. Вестник современной клинической медицины. 2022;15(1):52–61.
41. Lin Z, Liu S, Zhang K, Feng T, Luo Y, et al. Molecular mechanisms and therapeutic targets of acute exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease with Pseudomonas aeruginosa infection. Respir Res. 2025;26(1):115. https://doi.org/10.1186/s12931-025-03185-x
42. Lin Z, Jiang Y, Liu H, Yang J, Yang B, et al. Airway microbiota and immunity associated with chronic obstructive pulmonary disease severity. J Transl Med. 2025;23(1):962. https://doi.org/10.1186/s12967-025-06986-2
43. Khan MA, Ali ZS, Sweezey N, Grasemann H, Palaniyar N. Progression of Cystic Fibrosis Lung Disease from Childhood to Adulthood: Neutrophils, Neutrophil Extracellular Trap (NET) Formation, and NET Degradation. Genes (Basel). 2019;10(3):183. https://doi.org/10.3390/genes10030183
44. Law SM, Hardisty G, Gillan JL, Robinson NJ, Davidson DJ, et al. Neutrophil extracellular traps are associated with airways inflammation and increased severity of lung disease in cystic fibrosis. ERJ Open Res. 2024;10(6):00312-2024. https://doi.org/10.1183/23120541.00312-2024
45. Harwood KH, McQuade RM, Jarnicki A, Schneider-Futschik EK. Anti-Inflammatory Influences of Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator Drugs on Lung Inflammation in Cystic Fibrosis. Int J Mol Sci. 2021;22(14):7606. https://doi.org/10.3390/ijms22147606
46. Яшин С.С., Юнусова Ю.Р., Исакова Н.В., Сердобольская Ю.В. Кистозный фиброз (муковисцидоз). Современные проблемы науки и образования. 2022;(5):141.
47. Keir HR, Shoemark A, Dicker AJ, Perea L, Pollock J, et al. Neutrophil extracellular traps, disease severity, and antibiotic response in bronchiectasis: an international, observational, multicohort study. Lancet Respir Med. 2021;9(8):873-884. https://doi.org/10.1016/S2213-2600(20)30504-X
48. Каширская Н.Ю., Красовский С.А., Черняк А.В., Шерман В.Д., Воронкова А.Ю., и др. Динамика продолжительности жизни больных муковисцидозом, проживающих в Москве, и ее связь с получаемой терапией: ретроспективный анализ за 1993–2013 гг. Вопросы современной педиатрии. 2015;14(4):503-508.
49. Махмутова В.Р., Гембицкая Т.Е., Черменский А.Г., Титова О.Н., Кузубова Н.А. Мониторинг инфицирования и резистентности Achromobacter xylosoxidans у взрослых пациентов с муковисцидозом. РМЖ. Медицинское обозрение. 2021;5(7):462-467.
50. Колбин А.С., Гомон Ю.М., Карпов О.И., Балыкина Ю.Е., Проскурин М.А. Муковисцидоз как социально-экономическая проблема. Качественная клиническая практика. 2020;(5):38-49.
51. Morán G, Uberti B, Quiroga J. Role of Cellular Metabolism in the Formation of Neutrophil Extracellular Traps in Airway Diseases. Front Immunol. 2022;13:850416. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.850416
52. Keir HR, Chalmers JD. Neutrophil extracellular traps in chronic lung disease: implications for pathogenesis and therapy. Eur Respir Rev. 2022;31(163):210241. https://doi.org/10.1183/16000617.0241-2021
53. Totani L, Amore C, Piccoli A, Dell'Elba G, Di Santo A, et al. Type-4 Phosphodiesterase (PDE4) Blockade Reduces NETosis in Cystic Fibrosis. Front Pharmacol. 2021;12:702677. https://doi.org/10.3389/fphar.2021.702677
54. Chalmers JD, Burgel PR, Daley CL, De Soyza A, Haworth CS, et al. Phase 3 Trial of the DPP-1 Inhibitor Brensocatib in Bronchiectasis. N Engl J Med. 2025;392(16):1569-1581. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2411664
55. Weisel JW, Litvinov RI. Visualizing thrombosis to improve thrombus resolution. Res Pract Thromb Haemost. 2021;5(1):38-50. https://doi.org/10.1002/rth2.12469
Об авторах
Ю. Ю. ГорблянскийРоссия
Горблянский Юрий Юрьевич, д. м. н., проф., заведующий кафедрой профпатологии и пульмонологии
Ростов-на-Дону
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Ф. А. Авакянц
Россия
Авакянц Фаина Александровна, врач-пульмонолог, заведующий пульмонологическим отделением
Ростов-на-Дону
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
М. А. Шапкина
Россия
Шапкина Мария Александровна, лаборант кафедры профпатологии и пульмонологии
Ростов-на-Дону
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
М. Г. Лукашевич
Россия
Лукашевич Марина Георгиевна, к. м. н., доц., заведующий кафедрой детских болезней №3
Ростов-на-Дону
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Рецензия
Для цитирования:
Горблянский Ю.Ю., Авакянц Ф.А., Шапкина М.А., Лукашевич М.Г. Роль нетоза в патогенезе заболеваний органов дыхания. Медицинский вестник Юга России. 2026;17(3):43-50. https://doi.org/10.21886/2219-8075-2026-17-3-43-50
For citation:
Gorblyansky Yu.Yu., Avakyants F.A., Shapkina M.A., Lukashevich M.G. The role of netosis in the pathogenesis of respiratory diseases. Medical Herald of the South of Russia. 2026;17(3):43-50. (In Russ.) https://doi.org/10.21886/2219-8075-2026-17-3-43-50
JATS XML































