Перейти к:
Роль фактора роста нервов (NGF) в патогенезе лепры
https://doi.org/10.21886/2219-8075-2023-14-1-119-124
Аннотация
Лепра — хроническое инфекционное заболевание, вызываемое M. leprae, с преимущественным поражением кожи и периферической нервной системы. В настоящее время лепра в основном диагностируется клиницистами с использованием бактериоскопических исследований скарификатов и биопсии кожи. Однако разработка и применение новых диагностических критериев, особенно связанных с повреждением нервных волокон, остается актуальной задачей современной лепрологии. В настоящем обзоре рассмотрена важная роль нейротрофического фактора (фактор роста нервов, NGF) в патогенезе поражения нервной системы при лепре, установлена взаимосвязь уровней NGF с формами заболевания. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, поиск проводился по базам данных “Scopus”, “PubMed”, “Web of Science”, “elIBRARY”.
Ключевые слова
Для цитирования:
Луценко А.В., Сароянц Л.В. Роль фактора роста нервов (NGF) в патогенезе лепры. Медицинский вестник Юга России. 2023;14(1):119-124. https://doi.org/10.21886/2219-8075-2023-14-1-119-124
For citation:
Lutsenko A.V., Saroyants L.V. The role of nerve growth factor (NGF) in the pathogenesis of leprosy. Medical Herald of the South of Russia. 2023;14(1):119-124. (In Russ.) https://doi.org/10.21886/2219-8075-2023-14-1-119-124
Особенности иммунного ответа при поражении нервной системы возбудителем лепры Mycobacterium leprae (введение)
Лепра — хроническое инфекционное заболевание, вызываемое Mycobacterium leprae (M. leprae), характеризующееся разнообразными по клиническим проявлениям поражениями кожи, слизистых верхних дыхательных путей, периферической нервной системы, костно-мышечного аппарата и внутренних органов [1][2]. В основе современной классификации лепры, по Ридли-Джоплингу, лежит деление больных в зависимости от состояния их иммунологической реактивности по отношению к M.leprae, отражающейся в клинических проявлениях, а также в данных гистопатологических, бактериоскопических и иммунобиологических исследованиях. Лепрозный процесс рассматривается как непрерывный спектр иммунопатологических изменений между туберкулоидным и лепроматозным типами лепры, называемыми полярными типами, с выделением трёх пограничных и недифференцированной форм [3][4]. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) пришла к заключению о необходимости клинической классификации в зависимости от бактериологической нагрузки и предложила выделять многобактериальную лепру (МВ) и малобактериальную лепру (РВ) [2]. При РВ форме заболевания возникает интенсивный клеточно-опосредованный иммунный ответ, предотвращающий пролиферацию микобактерий в отличие от МВ-лепры, при которой иммунный ответ напротив способствуют диссеминации возбудителя в фагосомах макрофагов. При пограничных формах у пациентов выявляются иммунологические и гистопатологические характеристики, приближающиеся к полярным формам заболевания [5]. Одним из наиболее серьёзных и тяжёлых клинических осложнений лепрозного процесса является нарушение функции периферической нервной системы [6]. Лепра является наиболее частой причиной нетравматической невропатии и представляет классический пример инфекционного нейродегенеративного заболевания периферической нервной системы. M. leprae потенциально может инфицировать шванновские клетки в периферической нервной системе и вызывать расстройство сенсорных, моторных и вегетативных нервных функций [7]. Степень инвалидизации больного лепрой классифицируют как 0-ю степень (нарушения чувствительности не обнаруживают, деформацию стоп, кистей и глаз не видно), 1-ю степень (появляется расстройство чувствительности без деформации стоп, кистей или выраженных нарушений зрения) и 2-ю степень (с необратимыми неврологическими повреждениями) [8]. Многочисленные исследования доказывают, что более четверти пациентов с лепрой имеют ту или иную степень инвалидности, а около половины этих пациентов имеют инвалидность, связанную с серьёзными деформациями конечностей [3][6][9–11].
Поражение нервных клеток при лепре является результатом демиелинизации периферических нервных клеток. Возникшая невропатия, вызванная локализацией микобактерий лепры в нервных окончаниях и шванновских клетках, индуцирует ответ, опосредованный макрофагами и другими клетками, и в конечном итоге приводит к иммуноопосредованным поражениям [12][13]. Одной из стратегий выявления ранней дисфункции периферических нервов при лепре является распознавание поведения шванновских клеток посредством изменения маркеров синтеза миелиновой оболочки. Когда шванновские клетки сталкиваются с повреждением, в качестве автономного защитного механизма они восстанавливают состояние посредством ремиелинизации. На этот процесс, в частности, влияют такие факторы, как нейротрофины.
Биологические аспекты и механизмы действия фактора роста нервов (NGF)
Нейротрофины — группа близкородственных полипептидов, стимулирующих и контролирующих нейрогенез в центральной и периферической нервной системе [14–16]. Нейротрофины млекопитающих включают четыре основных нейротрофических фактора (фактор роста нервов (nerve growth factor, NGF), нейротрофический фактор мозга (brain-derived neurotrophic factor, BDNF), нейротрофин-3 (NT-3) и нейротрофин-4 (NT-4)), схожие по химической структуре, но различающиеся по принципу действия [17]. К настоящему моменту наиболее изученным представителем семейства нейротрофинов является фактор роста нервов (NGF). По современным представлениям, это секретируемый димерный белок с молекулярным весом 26 кДа, содержащий 118 аминокислотных остатков [17–19]. Впервые фактор роста нервов был описан R. Levi-Montalcini, а затем показана его ключевая роль в дифференцировке, созревании и сохранении целостности симпатических и сенсорных нейронов [20].
Известно, что протеолитические реакции способствуют синтезу зрелых молекул NGF из их предшественников пронейтрофинов (proNGF), также обладающих биологической активностью. В то время как зрелые нейротрофины способствуют выживанию нейронов, пронейротрофины оказывают противоположное, проапоптотическое действие [21].
Рецепторы NGF играют важную роль в модуляции болевого сигнала при различных физиологических и патологических состояниях, а генетические и метаболические особенности (например, при диабете,) способствуют специфической активности пронейтрофинов (proNGF) в эффекторных клетках или нейронах [22].
NGF играет важную роль в развитии и поддержании клеточных фенотипов в периферической нервной системе, а также в сохранении целостности холинергических нервов в центральной нервной системе [23]. NGF эндогенно продуцируется во время развития и созревания несколькими типами клеток, включая нейроны, шванновские клетки, олигодендроциты, лимфоциты, тучные клетки, макрофаги, кератиноциты и фибробласты. Его основной функцией в нервной системе является участие в воспалительных процессах и иммунных реакциях [24]. Шванновские клетки продуцируют NGF в ответ на дегенерацию аксонов. NGF препятствует поражению шванновских клеток, то есть низкий уровень данного фактора может способствовать развитию невропатии [25]. Однако в то время, как уровни NGF резко снижены в пораженных нервных стволах у больных с нейропатическими поражениями, у больных с хронической кожной гипералгезией наблюдается локальное повышение уровней NGF [25]. Концентрация NGF увеличивается во время воспалительных процессов в тканях, вызывая гипералгезию за счёт прямой активации ноцицепторов, что приводит к активации центральной нервной системы и нейрогенному воспалению [26]. В свою очередь, этот процесс приводит к высвобождению гистамина и увеличению количества тучных клеток и других клеток иммунной системы. Воспалительный отёк может вызывать дегенерацию нервных волокон. Показана положительная корреляция между уровнями NGF, NGF-R (рецептор нейротрофинов LNGFR или p75) и TGF-β (трансформирующий фактор роста). Это свидетельствует о синергических свойствах вышеперечисленных факторов, препятствующих уязвимости тканей при повреждении нервов [27]. Получены данные о том, что NGF восстанавливает чувствительность и оказывает пролиферативное и антиапоптотическое действие на кератиноциты и эндотелиальные клетки, способствует восстановлению болевой чувствительности и, соответственно, предотвращает развитие трофических язв, связанных с потерей ноцицепции [12][25]. Установлено, что NGF участвуют в регулировании формирования и заживления тканей. При заживлении тканей NGF активирует процессы, связанные с восстановлением иннервации [27][28], стимулирует миграцию фибробластов, а также оказывает пролиферативное и антиапоптотическое действие на кератиноциты и эндотелиальные клетки [29][30]. Более того, NGF играет двойную роль в выживании и гибели нейронов [31–33]. Исследования показали, что нейротрофины и их рецепторы, в том числе и NGF, широко экспрессируются в тканях скелета, участвуют в хондрогенезе, остеобластогенезе и остеокластогенезе, а также в регуляции процессов формирования и заживления тканей [34].
Повреждение периферического нерва или любое патологическое состояние, вызывающее разрыв между органом-мишенью и телом нервной клетки, действует как сигнал, побуждающий ненервные клеточные популяции (например, фибробласты) продуцировать NGF. Индукция синтеза NGF в этих клетках также модулируется цитокинами, которые проникают в место повреждения нерва, где инициируется регенерация нерва [35]. Кроме того, было показано, что NGF играет важную роль в воздействии на специфические реакции на повреждение посредством провоспалительного воздействия на нейтрофилы, эозинофилы, тучные клетки и Т-лимфоциты [36]. Взаимодействия NGF в тканевом микроокружении сложны, и его связь с TNF-α, который может индуцировать апоптоз в шванновских клетках путем связывания со специфическими рецепторами смерти, может приводить к антагонистическим эффектам. Это связано с тем, что NGF может активировать сигналы выживания в клетке-мишени. Один и тот же цитокин может оказывать антагонистическое действие в зависимости от его взаимодействия со специфическими рецепторами, а внутриклеточный каскад активируется после активации этих рецепторов [37]. Это подтверждает предположение о том, что NGF играет решающую роль в процессе миелинизации шванновских клеток в периферической нервной системе.
Взаимосвязь NGF с другими факторами роста
Фактор некроза опухоли (TNF-α) взаимодействуя с NGF индуцирует дифференцировку и созревание нейронов [38]. Была обнаружена связь между фактором роста нервов (NGF) и трансформирующим фактором роста (TGF-β) в глиальных клетках крыс и мышей с травмами позвоночника [27]. Аналогичные предположения высказаны при исследовании системных заболеваний (например, диабет и остеоартрит). В работе Facer с соавт. [39] показано, что действие фактора роста нервов связано с трансмембранным рецептором TrkA присутствующим в субэпидермальных волокнах кожи. Второй рецептор p75, названный так по молекулярной массе 75 кД, — также трансмембранный, но с другим механизмом действия. Он реагирует на гибель нейрона, то есть на нейродегенерацию. Взаимодействия NGF, как и других нейротрофинов, с этими рецепторами и определяют в значительной степени судьбу нейрона. По всей видимости, NGF действует как нейротрофный мессенджер, и его уровень регулируется иннервирующими нейронами [20]. Также установлено, что нервные окончания не затрагиваются, а присутствие NGF в кератиноцитах коррелирует с недостаточной чувствительностью к температуре. Использование антител NGF эффективно при лечении гипералгезии у пациентов с невропатией и поражениями нервных окончаний. Кроме того, физиологические комбинации NGF, NT-3 и нейротрофический фактор линии глиальных клеток могут способствовать восстановлению гомеостаза. Таким образом они могут быть использованы при лечении невропатической боли [25].
Все это доказывает, что NGF может играть ключевую роль в патогенезе поражения нервной системы при лепре. Известно, что при лепроматозной и туберкулоидной лепре регистрируются различные уровни NGF, более высокий для лепроматозной формы, а низкий — для туберкулоидной формы заболевания [40]. При лепроматозной форме лепры иммуноокрашивание образцов повреждённых тканей регистрирует значительные уровни NGF, что свидетельствует о более крупном и диффузном очаге поражения нервной системы [41][42]. Annand P et al. выяснили, что именно низкие значения NGF способствовали отсутствию NGF-зависимых ноцицептивных волокон в повреждённой коже больных лепрой [43]. Исследование Antunes et al. [9] показало, что у пациентов при туберкулоидной форме лепры уровень иммуноэкспрессии NGF-R был ниже в нервных волокнах и шванновских клетках по сравнению с контролем. Авторы выяснили, что явление гипоестезии связано с пониженной экспрессией NGF-R и гликопротеина-Р (PGP). При изучении взаимосвязи между клиническими формами лепры и эпизодами неврита было обнаружено, что у пациентов с пограничной формой лепры вероятность развития неврита в 2,69 раза выше, чем у пациентов с лепроматозной формой заболевания [44].
Местный клеточный иммунитет способен противостоять бактериальным инфекциям, однако воспаление может привести к необратимому повреждению тканей. Так, повреждение нервов происходит примерно в 10% случаев у больных малобациллярной лепрой, 40% больных с многобациллярной лепрой и особенно остро протекает у больных с реактивными состояниями [45][46].
Более высокие уровни NGF связаны с лепроматозными формами, а повышенная экспрессия NGF стимулирует экспрессию TGF-β (трансформирующий ростовый фактор), что снижает повреждение тканей в результате повреждения нервов. TGF-β является противовоспалительным агентом при восстановлении тканей при регенерации нервов и тканей [27][47]. Более высокая экспрессия TGF-β у больных лепроматозной формой заболевания связана с более высокой частотой апоптоза в очагах поражения, особенно в шванновских клетках [48][49].
Стратегия исследований для определения поражения периферических нервов на начальной стадии у больных лепрой должна заключаться в поиске маркеров, которые можно использовать в качестве диагностического инструмента для выявления раннего повреждения нерва. Таким маркером может стать определение концентрации NGF. И хотя NGF сам по себе не участвует в формировании миелина, для этого требуются другие факторы, такие как аксональные сигналы и активация TrkA. Было показано, что NGF может регулировать процесс миелинизации с противоположным эффектом между шванновскими клетками и олигодендроцитами посредством аксональных сигналов [50]. При повышении концентрации NGF в крови посылался аксональный сигнал. Аксональные сигналы, которые контролируют центральную миелинизацию, вероятно, очень похожи на те, которые контролируют периферическую миелинизацию. Кроме того, с использованием ROC анализа было определено пороговое значение NGF, с помощью которого можно выявить раннюю инвалидизацию у пациентов с MB-лепрой [51].
Заключение
Таким образом, исследования, анализирующие пациентов с различными клиническими формами лепры и различными реактивными состояниями (например, узловатая эритема), могут помочь лучше понять взаимосвязь между NGF и иммунным ответом, а также другими факторами, способствующими защите и регенерации нервов. Дальнейший анализ уровней NGF в тканях и крови между цитокинами и иммунным ответом важен для лучшего понимания участия фактора роста нервов в патофизиологии лепры и других неврологических поражениях. Определение пороговых значений NGF будет способствовать раннему выявлению процесса повреждения нервов, когда ещё возможна их регенерация.
Работа выполнена в рамках государственных заданий Министерства здравоохранения Российской Федерации «Разработка методов диагностики и лечения лепрозной инфекции на основе принципов персонифицированной медицины» и «Влияние социальной и медицинской реабилитации на повышение качества жизни больных лепрой»
Список литературы
1. Кубанов А.А., Абрамова Т.В., Мураховская Е.К., Ласачко В. А. Современный взгляд на лепру. Лечащий Врач. 2018;5:48. eLIBRARY ID: 35112483
2. Руководство по диагностике, лечению и профилактике лепры. Женева: ВОЗ; 2018.
3. Ridley DS, Jopling WH. A classification of leprosy for research purposes. Lepr Rev. 1962;33:119-28. https://doi.org/10.5935/0305-7518.19620014
4. Chaitanya VS, Cuello L, Das M, Sudharsan A, Ganesan P, et al. Analysis of a novel multiplex polymerase chain reaction assay as a sensitive tool for the diagnosis of indeterminate and tuberculoid forms of leprosy. Int J Mycobacteriol. 2017;6(1):1-8. https://doi.org/10.4103/2212-5531.201885
5. de Sousa JR, Sotto MN, Simões Quaresma JA. Leprosy As a Complex Infection: Breakdown of the Th1 and Th2 Immune Paradigm in the Immunopathogenesis of the Disease. Front Immunol. 2017;8:1635. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.01635
6. Gonçalves SD, Sampaio RF, Antunes CM. Fatores preditivos de incapacidades em pacientes com hanseníase [Predictive factors of disability in patients with leprosy]. Rev Saude Publica. 2009;43(2):267-74. (In Portuguese). https://doi.org/10.1590/s0034-89102009000200007
7. Barker LP. Mycobacterium leprae interactions with the host cell: recent advances. Indian J Med Res. 2006;123(6):748-59. PMID: 16885596.
8. Noor SM, Paracha MM, Ali Z, Rauf A. Frequency of disabilities in newly diagnosed patients of leprosy presenting to Lady Reading Hospital, Peshawar. Ann Pak Inst Med Sci. 2010;6(4):210-213.
9. Antunes SL, Chimelli LM, Rabello ET, Valentim VC, Corte-Real S, et al. An immunohistochemical, clinical and electroneuromyographic correlative study of the neural markers in the neuritic form of leprosy. Braz J Med Biol Res. 2006;39(8):1071-81. https://doi.org/10.1590/s0100-879x2006000800010
10. Pardillo FE, Fajardo TT, Abalos RM, Scollard D, Gelber RH. Methods for the classification of leprosy for treatment purposes. Clin Infect Dis. 2007;44(8):1096-9. https://doi.org/10.1086/512809
11. Aarão TL, Esteves NR, Esteves N, Soares LP, Pinto Dda S, et al. Relationship between growth factors and its implication in the pathogenesis of leprosy. Microb Pathog. 2014;77:66-72. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2014.10.005
12. Chang DS, Hsu E, Hottinger DG, Cohen SP. Anti-nerve growth factor in pain management: current evidence. J Pain Res. 2016;9:373-83. https://doi.org/10.2147/JPR.S89061
13. Michellin LB, Barreto JA, Marciano LH, Lara FA, Nogueira ME, et al. Leprosy patients: neurotrophic factors and axonal markers in skin lesions. Arq Neuropsiquiatr. 2012;70(4):281-6. https://doi.org/10.1590/s0004-282x2012000400012
14. Khan N, Smith MT. Neurotrophins and Neuropathic Pain: Role in Pathobiology. Molecules. 2015;20(6):10657-88. https://doi.org/10.3390/molecules200610657
15. Hallböök F. Evolution of the vertebrate neurotrophin and Trk receptor gene families. Curr Opin Neurobiol. 1999;9(5):616-21. https://doi.org/10.1016/S0959-4388(99)00011-2
16. Ibáñez CF. Emerging themes in structural biology of neurotrophic factors. Trends Neurosci. 1998;21(10):438-44. https://doi.org/10.1016/s0166-2236(98)01266-1
17. Skaper SD. Neurotrophic Factors: An Overview. Methods Mol Biol. 2018;1727:1-17. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7571-6_1
18. Кузник Б.И., Давыдов С.О., Ланда И.В. Фактор роста нервов (NGF) и его роль в условиях нормы и патологии. Успехи физиологических наук. 2019;50(4):64-80. https://doi.org/10.1134/S0301179819040052
19. Шпак А.А., Гехт А.Б., Дружкова Т.А., Трошина А.А., Гуляева Н.В. Фактор роста нервов у пациентов с возрастной катарактой. Офтальмохирургия. 2020;3:40-44. https://doi.org/10.25276/0235-4160-2020-3-40-44
20. Levi-Montalcini R, Skaper SD, Dal Toso R, Petrelli L, Leon A. Nerve growth factor: from neurotrophin to neurokine. Trends Neurosci. 1996;19(11):514-20. https://doi.org/10.1016/S0166-2236(96)10058-8
21. Ioannou MS, Fahnestock M. ProNGF, but Not NGF, Switches from Neurotrophic to Apoptotic Activity in Response to Reductions in TrkA Receptor Levels. Int J Mol Sci. 2017;18(3):599. https://doi.org/10.3390/ijms18030599
22. Aloe L, Rocco ML, Balzamino BO, Micera A. Nerve Growth Factor: A Focus on Neuroscience and Therapy. Curr Neuropharmacol. 2015;13(3):294-303. https://doi.org/10.2174/1570159x13666150403231920
23. Aloe L, Rocco ML, Bianchi P, Manni L. Nerve growth factor: from the early discoveries to the potential clinical use. J Transl Med. 2012;10:239. https://doi.org/10.1186/1479-5876-10-239
24. Lambiase A, Bracci-Laudiero L, Bonini S, Bonini S, Starace G, et al. Human CD4+ T cell clones produce and release nerve growth factor and express high-affinity nerve growth factor receptors. J Allergy Clin Immunol. 1997;100(3):408-14. https://doi.org/10.1016/s0091-6749(97)70256-2
25. Anand P. Neurotrophic factors and their receptors in human sensory neuropathies. Prog Brain Res. 2004;146:477-92. https://doi.org/10.1016/S0079-6123(03)46030-5
26. Wang H, Wang R, Thrimawithana T, Little PJ, Xu J, et al. The nerve growth factor signaling and its potential as therapeutic target for glaucoma. Biomed Res Int. 2014;2014:759473. https://doi.org/10.1155/2014/759473
27. Yu G, Fahnestock M. Differential expression of nerve growth factor transcripts in glia and neurons and their regulation by transforming growth factor-beta1. Brain Res Mol Brain Res. 2002;105(1-2):115-25. https://doi.org/10.1016/s0169-328x(02)00399-6
28. Harsum S, Clarke JD, Martin P. A reciprocal relationship between cutaneous nerves and repairing skin wounds in the developing chick embryo. Dev Biol. 2001;238(1):27-39. https://doi.org/10.1006/dbio.2001.0395
29. Ching YH, Sutton TL, Pierpont YN, Robson MC, Payne WG. The use of growth factors and other humoral agents to accelerate and enhance burn wound healing. Eplasty. 2011;11:e41. PMID: 22084646; PMCID: PMC3212033.
30. Pincelli C. Nerve growth factor and keratinocytes: a role in psoriasis. Eur J Dermatol. 2000;10(2):85-90. PMID: 10694304.
31. Choi S, Friedman WJ. Interleukin-1β enhances neuronal vulnerability to proNGF-mediated apoptosis by increasing surface expression of p75(NTR) and sortillin. Neuroscience. 2014;257:11-9. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2013.10.058
32. Datta-Mitra A, Kundu-Raychaudhuri S, Mitra A, Raychaudhuri SP. Cross talk between neuroregulatory molecule and monocyte: nerve growth factor activates the inflammasome. PLoS One. 2015;10(4):e0121626. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0121626
33. Mohamed R, Coucha M, Elshaer SL, Artham S, Lemtalsi T, ElRemessy AB. Inducible overexpression of endothelial proNGF as a mouse model to study microvascular dysfunction. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2018;1864(3):746-757. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2017.12.023
34. Terenghi G. Peripheral nerve regeneration and neurotrophic factors. J Anat. 1999;194 ( Pt 1)(Pt 1):1-14. https://doi.org/10.1046/j.1469-7580.1999.19410001.x
35. Bedi A, Maak T, Walsh C, Rodeo SA, Grande D, et al. Cytokines in rotator cuff degeneration and repair. J Shoulder Elbow Surg. 2012;21(2):218-27. https://doi.org/10.1016/j.jse.2011.09.020
36. Santambrogio L, Benedetti M, Chao MV, Muzaffar R, Kulig K, et al. Nerve growth factor production by lymphocytes. J Immunol. 1994;153(10):4488-95. PMID: 7963523.
37. Chan JR, Watkins TA, Cosgaya JM, Zhang C, Chen L, et al. NGF controls axonal receptivity to myelination by Schwann cells or oligodendrocytes. Neuron. 2004;43(2):183-91. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2004.06.024
38. Takei Y, Laskey R. Interpreting crosstalk between TNF-alpha and NGF: potential implications for disease. Trends Mol Med. 2008 Sep;14(9):381-8. doi: 10.1016/j.molmed.2008.07.002. Epub 2008 Aug 6. PMID: 18693138.
39. Facer P, Mann D, Mathur R, Pandya S, Ladiwala U, et al. Do nerve growth factor-related mechanisms contribute to loss of cutaneous nociception in leprosy? Pain. 2000;85(1-2):231-238. https://doi.org/10.1016/s0304-3959(99)00273-0
40. Aarão TLS, de Sousa JR, Falcão ASC, Falcão LFM, Quaresma JAS. Nerve Growth Factor and Pathogenesis of Leprosy: Review and Update. Front Immunol. 2018;9:939. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00939
41. Ooi WW, Srinivasan J. Leprosy and the peripheral nervous system: basic and clinical aspects. Muscle Nerve. 2004;30(4):393-409. https://doi.org/10.1002/mus.20113
42. Saunderson P. The epidemiology of reactions and nerve damage. Lepr Rev. 2000;71 Suppl:S106-10. https://doi.org/10.5935/0305-7518.20000079
43. Anand P, Pandya S, Ladiwala U, Singhal B, Sinicropi DV, Williams-Chestnut RE. Depletion of nerve growth factor in leprosy. Lancet. 1994;344(8915):129-30. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(94)91316-1
44. Richardus JH, Nicholls PG, Croft RP, Withington SG, Smith WC. Incidence of acute nerve function impairment and reactions in leprosy: a prospective cohort analysis after 5 years of follow-up. Int J Epidemiol. 2004;33(2):337-43. https://doi.org/10.1093/ije/dyg225
45. Schreuder PA. The occurrence of reactions and impairments in leprosy: experience in the leprosy control program of three provinces in northeastern Thailand, 1987-1995 [correction of 1978-1995]. III. Neural and other impairments. Int J Lepr Other Mycobact Dis. 1998;66(2):170-81. Erratum in: Int J Lepr Other Mycobact Dis. 1998;66(4):following 609. PMID: 9728449.
46. Rose P, Waters MF. Reversal reactions in leprosy and their management. Lepr Rev. 1991;62(2):113-21. https://doi.org/10.5935/0305-7518.19910013
47. Raychaudhuri SK, Raychaudhuri SP, Weltman H, Farber EM. Effect of nerve growth factor on endothelial cell biology: proliferation and adherence molecule expression on human dermal microvascular endothelial cells. Arch Dermatol Res. 2001;293(6):291-5. https://doi.org/10.1007/s004030100224
48. Spierings E, De Boer T, Zulianello L, Ottenhoff TH. The role of Schwann cells, T cells and Mycobacterium leprae in the immunopathogenesis of nerve damage in leprosy. Lepr Rev. 2000;71 Suppl:S121-9. PMID: 11201869.
49. Oliveira RB, Sampaio EP, Aarestrup F, Teles RM, Silva TP, et al. Cytokines and Mycobacterium leprae induce apoptosis in human Schwann cells. J Neuropathol Exp Neurol. 2005;64(10):882-90. https://doi.org/10.1097/01.jnen.0000182982.09978.66
50. Patapoutian A, Reichardt LF. Trk receptors: mediators of neurotrophin action. Curr Opin Neurobiol. 2001;11(3):272-80. https://doi.org/10.1016/s0959-4388(00)00208-7
51. Widasmara D, Menaldi SL, Turchan A. Evaluation of nerve growth factor serum level for early detection of leprosy disability. Pan Afr Med J. 2020;37:145. https://doi.org/10.11604/pamj.2020.37.145.15213
Об авторах
А. В. ЛуценкоРоссия
Луценко Анна Викторовна, к.б.н., научный сотрудник отдела по изучению лепры, ассистент кафедры «Клиническая иммунология с курсом последипломного образования»; доцент кафедры «Прикладная биология и микробиология»
Астрахань
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Л. В. Сароянц
Россия
Сароянц Людмила Валентиновна, д.м.н., заведующая отделом по изучению лепры; профессор кафедры физиологии, морфологии, генетики и биомедицины
Астрахань
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Рецензия
Для цитирования:
Луценко А.В., Сароянц Л.В. Роль фактора роста нервов (NGF) в патогенезе лепры. Медицинский вестник Юга России. 2023;14(1):119-124. https://doi.org/10.21886/2219-8075-2023-14-1-119-124
For citation:
Lutsenko A.V., Saroyants L.V. The role of nerve growth factor (NGF) in the pathogenesis of leprosy. Medical Herald of the South of Russia. 2023;14(1):119-124. (In Russ.) https://doi.org/10.21886/2219-8075-2023-14-1-119-124