<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">mvjr</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Медицинский вестник Юга России</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Medical Herald of the South of Russia</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2219-8075</issn><issn pub-type="epub">2618-7876</issn><publisher><publisher-name>The Rostov State Medical University</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.21886/2219-8075-2024-15-1-148-158</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">mvjr-1874</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ВНУТРЕННИЕ БОЛЕЗНИ, АЛЛЕРГОЛОГИЯ И ИММУНОЛОГИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>INTERNAL DISEASES, ALLERGOLOGY AND IMMUNOLOGY</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Динамическая оценка Т-лимфоцитов и гуморального иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от содержания CD3+CD8+T-лимфоцитов</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Dynamic assessment of T-lymphocytes and humoral immunity in patients with acute coronary syndrome, with and without COVID-19, depending on the content of CD3+CD8+T-lymphocytes</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-1682-2028</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Сафронова</surname><given-names>Э. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Safronova</surname><given-names>E. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Сафронова Элеонора Аркадьевна, к.м.н., доцент, доцент кафедры поликлинической терапии и клинической фармакологии</p><p>Челябинск</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Eleonora A. Safronova, Cand. Sci. (Med.), Associate Professor, Associate Professor of the Department of Polyclinic Therapy and Clinical Pharmacology</p><p>Chelyabinsk</p></bio><email xlink:type="simple">safronovaeleonora68@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-5367-2001</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Рябова</surname><given-names>Л. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Ryabova</surname><given-names>L. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Рябова Лиана Валентиновна, д.м.н., доцент, профессор кафедры безопасности жизнедеятельности, медицины катастроф, скорой и неотложной медицинской помощи</p><p>Челябинск</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Liana V. Ryabova, Dr. Sci. (Med.), Associate Professor, Professor of the Department of Life Safety, Disaster Medicine, Emergency Medicine</p><p>Chelyabinsk</p></bio><email xlink:type="simple">lianarabowa@rambler.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-4371-4161</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Зурочка</surname><given-names>А. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Zurochka</surname><given-names>A. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Зурочка Александр Владимирович, ЗДН РФ, д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории иммунопатофизиологии; заведующий лабораторией иммунобиотехнологии Российско-Китайского Центра</p><p>Челябинск</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Aleksandr V. Zurochka, honored worker of science of the Russian Federation, Dr. Sci. (Med.), professor, leading researcher, laboratory of immunopathophysiology; head of laboratory of immunobiotechnology</p><p>Ekaterinburg</p><p>Chelyabinsk</p></bio><email xlink:type="simple">av_zurochka@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-1852-9650</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Добрынина</surname><given-names>М. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Dobrynina</surname><given-names>M. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Добрынина Мария Александровна, к.м.н., научный сотрудник лаборатории иммунопатофизиологии; доцент кафедры терапии Медико-биологического университета инноваций и непрерывного образованиЯ</p><p>Екатеринбург</p><p>Москва</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Maria A. Dobrynina, Cand. Sci. (Med.), Researcher, laboratory ofimmunopathophysiology; assistant professor of the Department of Therapy of the University of Innovation and Continuing Education of the State Research Center</p><p>Ekaterinburg</p><p>Moscow</p></bio><email xlink:type="simple">mzurochka@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-3"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-7270-2675</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Задорина</surname><given-names>Е. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Zadorina</surname><given-names>E. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Задорина Елена Владимировна, к.б.н., доцент кафедры спортивного совершенствования</p><p>Челябинск</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Elena V. Zadorina, Cand. Sci. (Bio.), Associate Professor of the Department of Sports Improvement</p><p>Chelyabinsk</p></bio><email xlink:type="simple">zadorinaev@susu.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-4"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Южно-Уральский государственный медицинский университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>South Ural State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>Институт иммунологии и физиологии; Южно-Уральский Государственный Университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Institute of Immunology and Physiology; South Ural State University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-3"><aff xml:lang="ru"><institution>Институт иммунологии и физиологии; Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Institute of Immunology and Physiology; Federal Medical Biophysical Center named after. A.I. Burnazyan FMBA</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-4"><aff xml:lang="ru"><institution>Южно-Уральский Государственный Университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>South Ural State University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2024</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>17</day><month>03</month><year>2024</year></pub-date><volume>15</volume><issue>1</issue><fpage>148</fpage><lpage>158</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Сафронова Э.А., Рябова Л.В., Зурочка А.В., Добрынина М.А., Задорина Е.В., 2024</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Сафронова Э.А., Рябова Л.В., Зурочка А.В., Добрынина М.А., Задорина Е.В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Safronova E.A., Ryabova L.V., Zurochka A.V., Dobrynina M.A., Zadorina E.V.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1874">https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1874</self-uri><abstract><sec><title>Цель</title><p>Цель: оценить динамику Т- и В-клеточного звеньев иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом (ОКС), перенёсших и не перенёсших COVID-19, в зависимости от количества CD3+CD8+T-лимфоцитов.</p></sec><sec><title>Материалы и методы</title><p>Материалы и методы: обследованы 65 мужчин с ОКС, которым проведено стентирования коронарных артерий. Изучены иммунологические показатели методом проточной цитометрии, общий анализ крови исходно и через 28 дней после поступления.</p></sec><sec><title>Результаты</title><p>Результаты: максимальный уровень тропонина отмечался у лиц с ОКС, переболевших COVID-19 и имеющих нормальный уровень CD3+CD8Цель: оценить динамику Т- и В-клеточного звеньев иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом (ОКС), перенёсших и не перенёсших COVID-19, в зависимости от количества CD3+CD8+T-лимфоцитов.</p></sec><sec><title>Материалы и методы</title><p>Материалы и методы: обследованы 65 мужчин с ОКС, которым проведено стентирования коронарных артерий. Изучены иммунологические показатели методом проточной цитометрии, общий анализ крови исходно и через 28 дней после поступления.</p></sec><sec><title>Результаты</title><p>Результаты: максимальный уровень тропонина отмечался у лиц с ОКС, переболевших COVID-19 и имеющих нормальный уровень CD3+CD8+T-клеток. Тромбозы стентов и умершие были только среди пациентов, имевших в анамнезе COVID-19, в основном со сниженными CD3+CD8+T-клетками, которым определялись показатели иммунного статуса в динамике. Абсолютные числа Т-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-лимфоцитов поздней активации, В-лимфоцитов (CD3-CD19+CD5+), В-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) были минимальным у лиц с низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевшими ранее COVID-19, а через 28 дней достоверно в динамике у них повысились. Натуральные киллеры достоверно повысились в динамике у больных с исходно низкими и нормальными CD3+CD8+Tлимфоцитами, болевших COVID-19.</p></sec><sec><title>Выводы</title><p>Выводы: после стентирования коронарных артерий в динамике у лиц со сниженными CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевших COVID-19, достоверно повысились T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), Т-хелперы, CD3+CD8+T-лимфоциты, T-NK лимфоциты, NK-лимфоциты, Т-лимфоциты поздней активации, Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации, В-лимфоциты, снизились иммуноглобулин G и C3a фрагмент комплемента. Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации значимо снизились у пациентов без COVID-19 ранее с исходно низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами. У лиц, переболевших COVID-19, с нормальными CD3+CD8+T-лимфоцитами в динамике повысились T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), NKлимфоцитов, Т-лимфоциты поздней активации.</p></sec><sec><title>T-клеток</title><p>T-клеток. Тромбозы стентов и умершие были только среди пациентов, имевших в анамнезе COVID-19, в основном со сниженными CD3+CD8+T- клетками, которым определялись показатели иммунного статуса в динамике. Абсолютные числа Т-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-лимфоцитов поздней активации, В-лимфоцитов (CD3-CD19+CD5+), В-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) были минимальным у лиц с низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевшими ранее COVID-19, а через 28 дней достоверно в динамике у них повысились. Натуральные киллеры достоверно повысились в динамике у больных с исходно низкими и нормальными CD3+CD8+Tлимфоцитами, болевших COVID-19.</p></sec><sec><title>Выводы</title><p>Выводы: после стентирования коронарных артерий в динамике у лиц со сниженными CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевших COVID-19, достоверно повысились T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), Т-хелперы, CD3+CD8+T-лимфоциты, T-NK лимфоциты, NK-лимфоциты, Т-лимфоциты поздней активации, Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации, В-лимфоциты, снизились иммуноглобулин G и C3a фрагмент комплемента. Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации значимо снизились у пациентов без COVID-19 ранее с исходно низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами. У лиц, переболевших COVID-19, с нормальными CD3+CD8+T-лимфоцитами в динамике повысились T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), NKлимфоцитов, Т-лимфоциты поздней активации.</p></sec></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><sec><title>Objective</title><p>Objective: to evaluate the dynamics of the T- and B-cell immunity in patients with acute coronary syndrome (ACS) who have and have not had COVID-19, depending on the number of CD3+CD8+T-lymphocytes.</p></sec><sec><title>Materials and methods</title><p>Materials and methods: 65 men with ACS who underwent coronary artery stenting were examined. Immunological parameters were studied using flow cytometry, a complete blood count at baseline and 28 days after admission.</p></sec><sec><title>Results</title><p>Results: The maximum troponin level was observed in individuals with ACS who had recovered from COVID-19 and had a normal level of CD3+CD8+T cells. Stent thromboses and deaths occurred only among patients with a history of COVID-19, mainly with reduced CD3+CD8+T-cells, for which indicators of immune status were determined over time. The absolute numbers of T lymphocytes, T helper cells, late activated T lymphocytes, B lymphocytes (CD3-CD19+CD5+), B lymphocytes (CD45+CD3-CD19+) were minimal in individuals with low CD3+CD8+ T lymphocytes who had previously suffered from COVID-19, and significantly increased in their dynamics after 28 days. Natural killer cells significantly increased in dynamics in patients with initially low and normal CD3+CD8+T-lymphocytes who suffered from COVID-19.</p></sec><sec><title>Conclusions</title><p>Conclusions: after stenting of the coronary arteries over time, in people with reduced CD3+CD8+Tlymphocytes and patients with COVID-19, T-lymphocytes (CD45+CD3+CD19-), T-helper cells, CD3+CD8+T-lymphocytes significantly increased, T-NK lymphocytes, NK lymphocytes, late-activated T-lymphocytes, T-regulatory lymphocytes and late-activated T-regulatory cells, B-lymphocytes, immunoglobulin G and complement fragment C3a decreased. T-regulatory lymphocytes and late-activated T-regulatory cells were significantly reduced in patients without prior COVID-19 with baseline low CD3+CD8+T-lymphocytes. In individuals with normal CD3+CD8+T-lymphocytes who recovered from COVID-19, T-lymphocytes (CD45+CD3+CD19-), NK-lymphocytes, and late-activated T-lymphocytes increased over time.</p></sec></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>COVID-19</kwd><kwd>острый коронарный синдром</kwd><kwd>стентирование коронарных артерий</kwd><kwd>Т-лимфоциты</kwd><kwd>гуморальный иммунитет</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>COVID-19</kwd><kwd>acute coronary syndrome</kwd><kwd>coronary artery stenting</kwd><kwd>T lymphocytes</kwd><kwd>humoral immunity</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><sec><title>Введение</title><p>Острый инфаркт миокарда является одной из наиболее серьёзных причин смертности в мире и огромным бременем для мировой экономики. В процессе ишемии/реперфузионного повреждения миокарда важную роль играет модуляция иммунных клеток. Как известно, Т-клетки привлекаются к повреждению миокарда и одномоментно высвобождают провоспалительные и противовоспалительные цитокины. Т-клетки и макрофаги играют важную роль в поддержании сердечного гомеостаза и организации восстановления тканей [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. COVID-19 повреждает многие звенья иммунной системы и особенно Т-лимфоциты [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Тяжёлый острый респираторный синдром, вызванный коронавирусом-2, может поражать сердечно-сосудистую систему, вызывая широкий спектр осложнений, включая острое повреждение миокарда. Миокард может быть повреждён прямой вирусной инвазией или косвенными механизмами, поддерживаемыми системным воспалением, иммуноопосредованным ответом и нарушением регуляции ренин-ангиотензиновой системы. Повреждение миокарда поражает около четверти пациентов с COVID-19, может проявляться даже при отсутствии предшествующих сердечно-сосудистых заболеваний и связано с более высокими показателями смертности и долгосрочными последствиями [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. Патофизиологические механизмы отсроченных осложнений до сих пор плохо изучены, при этом наблюдается диссоциация между текущими симптомами и объективными показателями сердечно-лёгочного здоровья. Ожидается, что COVID-19 изменит долгосрочную траекторию многих хронических заболеваний сердца, которыми часто страдают люди, подверженные риску тяжёлого заболевания [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. В обзоре Zuin M. et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>] показано, что перенесённый COVID-19 повышает риск развития острого инфаркта миокарда (ОИМ) [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>]. Патофизиология тяжёлого острого респираторного синдрома коронавируса (SARS-CoV-2) характеризуется перепроизводством воспалительных цитокинов (IL-6 и TNF-α), что приводит к системному воспалению и синдрому полиорганной дисфункции, остро поражая сердечно-сосудистую систему. Повышенный риск инфаркта миокарда, молниеносный миокардит, быстро развивающийся с угнетением систолической функции левого желудочка, аритмии, венозная тромбоэмболия и кардиомиопатии, имитирующие проявления ОИМ с подъёмом сегмента ST (пST), являются наиболее распространенными сердечно-сосудистыми осложнениями, описанными у пациентов с COVID-19. Более того, тропизм SARS-CoV-2 и взаимодействие с ренин-ангиотензиновой системой через рецептор АПФ 2, возможно, усиливают воспалительную реакцию и повреждение сердца. Нарушения Т-клеточного иммунитета у пациентов с постковидным синдромом проиллюстрировано в работах К.С. Савчук и др. [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. CD8+ Т-клетки накапливаются в некротическом миокарде при ОИМ. На данный момент остается неясным, способствуют ли CD8+CD28+ Т-клетки, составляя субпопуляцию CD8+ Т-клеток, повреждению миокарда. В исследовании Zang et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>] приняли участие 92 пациента с ОИМ и 28 здоровых субъектов контрольной группы. Уровень CD8+CD28+ Т-клеток в образцах периферической крови определяли методом проточной цитометрии. Также выявляли плазменный сердечный тропонин I и фракцию выброса левого желудочка. Долгосрочный прогноз пациентов оценивали по основным неблагоприятным сердечным и цереброваскулярным событиям в течение 12-месячного периода наблюдения. Наши результаты также показали, что у пациентов с ОИМ, у которых было обнаружено большое количество CD8+CD28+ Т-клеток, был увеличен размер инфаркта и ухудшена функция желудочков. Авторы предположили, что цитотоксический CD8+CD28+Т-клеточный некроз миокарда может действовать как новый и альтернативный путь развития ОИМ. На сегодняшний день до конца не исследованы Т-клеточные и гуморальные звенья иммунитета, играющие роль в возникновении острого коронарного синдрома (ОКС), в том числе у лиц, перенёсших COVID-19, что определяет актуальность проводимого исследования.</p><p>Цель исследования — оценить динамику Т- и В-клеточного звеньев иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом, перенёсших и не перенёсших COVID-19, в зависимости от количества CD3+CD8+T-лимфоцитов.</p></sec><sec><title>Материалы и методы</title><p>Обследованы 65 пациентов мужского пола с острым коронарным синдромом (ОКС) (нестабильной стенокардией и острым инфарктом миокарда (ОИМ)) в возрасте от 40 до 65 лет, которым по результатам коронароангиографии потребовалось проведение стентирования коронарных артерий. Перед обследованием все пациенты подписывали информированное согласие (протокол Этического комитета ЮУГМУ Минздрава России №9 от 11.09.2006 и протокол этического комитета ГАУЗ ОТКЗ ГКБ №1 г. Челябинска №12 от 10.10.2022).</p><p>Всем больным проводилась оценка иммунологических показателей методом проточной цитометрии [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. В зависимости от количества CD3+CD8+ T-лимфоцитов (отдельно для болевших и не болевших COVID-19) выделены следующие группы: с пониженным числом CD3+CD8+ T-клеток, нормальным и повышенным. Показатели Т-клеточного и гуморального звеньев иммунитета регистрировали при поступлении в стационар и в динамике через 28 дней с момента поступления.</p><p>Общий анализ крови (25 параметров: лейкоцитарный, эритроцитарный и тромбоцитарный ростки кроветворения), количественный и качественный состав ростков кроветворения проведен стандартизованным методом на гематологическом анализаторе Medonic M20 (Швеция).</p><p>Методом проточной цитометрии гейтировали по панлейкоцитарному маркеру CD45+: CD3+ (Т-лимфоциты общие), CD3+CD4+ (хелперы индукторы), CD3+CD8+ (цитотоксические Т-лимфоциты), CD3+CD16+CD56+ (TNK-клетки) CD3-CD16+CD56+ (натуральные киллеры), CD3-CD19+CD5+ (подгруппа В-лимфоцитов), CD3+CD4+CD25+CD127- (Т-регуляторные клетки/супрессоры), CD3+CD4+CD25+ (активированные хелперы, ранняя активация лимфоцитов), CD45+CD3+HLA-DR (активированные Т-лимфоциты — поздняя активация лимфоцитов), В-клеток памяти CD27+, «БекманКультер», «Биолегенда» (США). Оценку иммунного статуса осуществляли методом проточной цитометрии на цитофлюориметре «Navios» (Beckman Coulter, США) по стандартизованной технологии оценки лимфоцитарного звена иммунитета [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>].</p><p>Оценка фагоцитарной активности частиц латекса диаметром 1,7 мкм нейтрофилами (активность фагоцитоза, интенсивность фагоцитоза, фагоцитарное число), спонтанная и индуцированная НСТ-активность нейтрофилов морфологическим методом (световая микроскопия с использованием микроскопов Olimpus (Япония) [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>]. Исследование проводится общепринятыми методами оценки функциональной активности фагоцитов.</p><p>Уровни общих IgA, IgG, IgM, специфические IgM, IgA, IgG, к короновирусу COVID-19, C1-ингибитора, С3а и С5а компонентов комплемента (ВекторБест, Россия, ООО «Цитокин», Россия) методом иммуноферментного анализа на иммуноферментном анализаторе Multiscan FC Thermoscientific (Китай). Исследование проводилось общепринятыми стандартизованными методами иммуноферментного анализа согласно протоколам производителей тест систем.</p><p>Обработка и анализ данных осуществлялись с помощью автоматизированной программы Statplus 2005. Так как распределение в количественных данных было нормальным, использованные статистические критерии были параметрическими [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>].</p></sec><sec><title>Результаты</title><p>Следует отметить, что повышение CD3+CD8+T-лимфоцитов наблюдалось только у лиц, перенёсших новую коронавирусную инфекцию (COVID-19). У всех пациентов с высокими CD3+CD8+ T- клетками был ОИМ, из них у 2 — с подъёмом сегмента ST (пST) и у 2 — без подъёма ST (бп ST). У лиц с пониженными и нормальными CD3+CD8+ T- лимфоцитами, не болевшими COVID-19, преобладали больные с нестабильной стенокардией. Наибольшие баллы риска по GRACE наблюдались у пациентов с нормальными и повышенными CD3+CD8+ T-клетками, переболевших COVID-19. Продолжительность госпитализации была максимальной у больных с повышенными CD3+CD8+ T-клетками с COVID-19 в анамнезе, а минимальной — у лиц с нормальными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, не болевших COVID-19. Тромбозы стентов были у 3 (12,5%) больных, перенёсших COVID-19, и нормальными CD3+CD8+ T-клетками. Наибольшее количество стентов (в среднем 2) в настоящую госпитализацию было имплантировано пациентам с повышенными CD3+CD8+ T-лимфоцитами. Максимальные цифры тропонина регистрировались у лиц с нормальными и повышенными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, болевших COVID-19 ранее (10,61±2,57 и 8,96±6,98 нг/мл соответственно). Морфин для купирования коронарных болей чаще применялся в этих же группах: у 9 (37,5%) с нормальными CD3+CD8+ T-клетками и у 3 (75%) — с повышенными CD3+CD8+ T-лимфоцитами. Таким образом, наиболее клинически тяжёлыми были пациенты, перенёсшие COVID-19 и имевшие нормальные или повышенные CD3+CD8+ T-клетки.</p><p>Исходя из данных, представленных в таблице 1, можно отметить, что по возрасту между группами не было различий. Диагноз нестабильной стенокардии преобладал у лиц без COVID-19 в анамнезе, в большей степени с нормальными CD3+CD8+ T-клетками. У пациентов с повышенными CD3+CD8+ T-клетками и перенёсших COVID-19, в 100% случаев был ОИМ как с пST (50%), так и без пST (50%). Среди лиц с нормальными CD8-лимфоцитами и не болевших COVID-19, не было больных с ОИМ с пST. По количеству пациентов с ОИМ с пST лидировали лица, перенёсшие COVID-19 и имеющие нормальные или повышенные CD3+CD8+ T-клетки. В прошлом ОИМ из числа повторно обследованных пациентов перенесли в большей мере больные, не болевшие COVID-19. Больший риск по GRACE имели лица с COVID-19 ранее и повышенными, и нормальными CD8-лимфоцитами. Наибольшее количество стентов из числа обследованных дважды (исходно и в динамике) пациентов было установлено лицам со сниженными CD3+CD8+ T-клетками, перенёсших COVID-19.</p><p>У больных с ОКС, перенёсших COVID-19, были более выраженные изменения в клинико-иммунологических показателях по сравнению с таковыми, не болевшими COVID-19. В частности, была выше продолжительность госпитализации — максимальная у лиц с повышенными CD3+CD8+T-клетками, на втором месте больные с нормальными CD3+CD8+ T-лимфоцитами. Также коэффициент атерогенности и тропонин были больше у пациентов с ОКС, перенёсших COVID-19. Максимальный уровень тропонина отмечался у лиц с ОКС, переболевших COVID-19 и имеющих нормальный уровень CD3+CD8+ T-клеток. Тромбозы стентов и умершие были только среди пациентов, имевших в анамнезе COVID-19, в большей степени со сниженными CD3+CD8+ T-клетками, но которым определялись показатели иммунного статуса в динамике. Как отмечено в наших предыдущих работах, большая смертность и увеличение тромбозов стентов были у лиц с нормальными и повышенными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, но им не всем брались иммунные показатели в динамике вследствие быстрого летального исхода. Максимальное использование морфина для купирования коронарных болей было у больных с ОКС с нормальными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, переболевших COVID-19.</p><p>В таблице 1 представлена сравнительная оценка Т-лимфоцитов и гуморального звена иммунитета у лиц с ОКС.</p><table-wrap id="table-1"><caption><p>Таблица/Table 1</p><p>Сравнительная оценка Т-клеточного и гуморального звеньев иммунитета у больных с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от содержания CD3+CD8+ T-лимфоцитов исходно и в динамике</p><p>Comparative assessment of T-cell and humoral immunity in patients with acute coronary syndrome who have and have not had COVID-19, depending on the content of CD3+CD8+ T-lymphocytes initially and over time</p><p>Примечание: р — достоверность различий, первая и вторая цифра после р обозначают, какие группы сравнивались</p><p>Note: p — significance of differences, the first and second digit after p indicate which groups were compared</p></caption><table><tbody><tr><td>Показатель
Index</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td><td>Не болевшие COVID-19
Not sick with COVID-19</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td><td>Не болевшие COVID-19
Not sick with COVID-19</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td></tr><tr><td>CD3+CD8+ T-клетки
CD3+CD8+ T- cells</td><td>Группа I — исходно CD3+CD8+ T-клетки пониженные (n=22)
Group 1 – initially CD3+CD8+ T-cells downgraded (n=22)</td><td>Группа II — в динамике пациенты с исходно пониженными CD3+CD8+ T-клетками(n=22)
Group 2 — in dynamics patients with initially low CD3+CD8+ T-cells(n=22)</td><td>Группа III — исходно CD3+CD8+ T-клетки пониженные (n=7)
Group 1 — initially CD3+CD8+ T-cells downgraded (n=7)</td><td>Группа IV — в динамике пациенты с исходно пониженными CD3+CD8+ T-клетками(n=7)
Group 2 — in dynamics patients with initially low CD3+CD8+ T-cells(n=7)</td><td>Группа V — исходно нормальные CD3+CD8+ T-клетки(n=24)
Group 5 — initially CD3+CD8+ T-cells normal(n=24)</td><td>Группа VI — в динамике пациенты с исходно нормальными CD3+CD8+ T-клетками(n=24)
Group 6 — in dynamics patients with initially normal CD3+CD8+ T-cells(n=24)</td><td>Группа VII — исходно CD3+CD8+ T- клетки нормальные (n=8)
Group 5 — initially CD3+CD8+ T-cells normal(n=8)</td><td>Группа VIII — в динамике пациенты с исходно нормальными CD3+CD8+ T-клетками(n=8)
Group 8 — in dynamics patients with initially normal CD3+CD8+ T-cells(n=8)</td><td>Группа XIX — исходно CD3+CD8+ T-клетки повышенные (n=4)
Group 9 — initially CD3+CD8+ T-cells elevated (n=4)</td><td>Группа X — в динамике пациенты с исходно повышенными CD3+CD8+ T-клетками(n=4)
Group 10 — in dynamics patients with initially elevated CD3+CD8+ T-cells(n=4)</td></tr><tr><td>T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), %
T-lymphocytes (CD45+CD3+ CD19-), %</td><td>69,94±1,73
p1,9=0,037</td><td>70,30±1,81
р2,9=0,035</td><td>72,31±2,99</td><td>66,86±2,02</td><td>73,09±1,61
р5,9=0,007</td><td>72,49±1,81</td><td>71,36±2,81
р7,9=0,042</td><td>73,17±3,67</td><td>61,60±4,54</td><td>67,97±4,34</td></tr><tr><td>T-лимфоциты (CD45+CD3+ CD19-), 10⁶ кл/л
T-lymphocytes (CD45+CD3+ CD19-), 10⁶ cells/l</td><td>958,41±101,49
р1,2=0,0001
p1,5=0,0001
р1,7=0,0001
р1,9=0,0000</td><td>1697,27±107,37</td><td>1184,75±173,91
p3,5=0,022
р3,9=0,0006</td><td>1470,5±225,28</td><td>1647,33±112,98
р5,6=0,043
p5,9=0,010</td><td>1927,67±113,69</td><td>1780,62±155,95
p7,9=0,018</td><td>2099,62±306,91</td><td>2348,75±102,25</td><td>2246,5±303,65</td></tr><tr><td>T-хелперы (CD45+CD3+ CD4+), %
T-helpers (CD45+CD3+ CD4+), %</td><td>49,59±2,03</td><td>45,76±1,92</td><td>50,44±3,31
Р3,9=0,005</td><td>44,66±3,11</td><td>46,46±2,03
p5,9=0,006</td><td>45,57±2,20</td><td>44,36±2,99
p7,9=0,023</td><td>45,83±2,62</td><td>32,20±4,67</td><td>39,95±4,87</td></tr><tr><td>T-хелперы (CD45+CD3+ CD4+), 10⁶ кл/л
T-helpers (CD45+CD3+ CD4+), 10⁶ cells/l</td><td>701,64±94,21
р1,2=0,0008
p1,7=0,013
p1,9=0,018</td><td>1108,09±75,95</td><td>862,00±160,40</td><td>988,37±160,57</td><td>1075,17±98,30</td><td>1215,29±92,51</td><td>1100,25±111,3</td><td>1330,87±222,23</td><td>1213,75±126,46</td><td>1301,5±195,80</td></tr><tr><td>T-цитотоксические (CD45+CD3+ CD8+), %
T-cytotoxic (CD45+CD3+ CD8+), %</td><td>18,83±1,42
р1,5=0,001
p1,7=0,014
p1,9=0,001</td><td>21,45±1,94</td><td>20,24±3,92
P3,9=0,049</td><td>19,36±2,29</td><td>25,55±1,51</td><td>24,74±1,91</td><td>24,76±1,67
p7,9=0,033</td><td>25,48±3,58</td><td>30,45±2,00</td><td>27,23±3,29</td></tr><tr><td>T-цитотоксические (CD45+CD3+ CD8+), 10⁶ кл/л
T-cytotoxic (CD45+CD3+ CD8+), 10⁶ cells/l</td><td>238,36±18,81
p1,2=0,0001
p1,5=0,0001
p1,7=0,0001
p1,9=0,0001</td><td>517,45±64,72</td><td>286,00±27,59
p3,5=0,0001
p3,7=0,0002
p3,9=0,0001</td><td>419,5±79,6</td><td>566,04±36,24
p5,9=0,0001</td><td>653,37±55,43</td><td>616,75±65,00
p7,9=0,0001</td><td>695,25±147,78</td><td>1163,25±51,256</td><td>923,75±184,44</td></tr><tr><td>Индекс соотношения CD4/CD8 усл. ед.
Index ratios CD4/CD8 cond. units</td><td>3,30±0,45
p1,5=0,004
p1,7=0,038
p1,9=0,024</td><td>2,80±0,44</td><td>3,20±0,61
p3,5=0,005
p3,7=0,031
p3,9=0,018</td><td>2,69±0,47</td><td>2,00±0,16
p5,9=0,013</td><td>2,07±0,20</td><td>1,89±0,21
p7,9=0,010</td><td>2,23±0,48</td><td>1,05±0,09
р9,10=0,049</td><td>1,55±0,26</td></tr><tr><td>T-NK лимфоциты (CD45+CD3+CD 16+ CD 56+), %
T-NK lymphocytes (CD45+CD3+CD 16+ CD 56+), %</td><td>5,95±1,21</td><td>7,34±1,07</td><td>3,44±1,17
p3,5=0,028
p3,7=0,041
p3,9=0,021</td><td>7,16±2,89</td><td>6,32±0,74</td><td>6,14±0,78</td><td>6,45±1,11</td><td>8,05±2,21</td><td>9,80±3,22</td><td>8,13±1,22</td></tr><tr><td>T-NK лимфоциты (CD45+CD3+CD 16+CD56+), 10⁶ кл/л
T-NK lymphocytes (CD45+CD3+CD 16+ CD 56+), 10⁶ cells/l</td><td>61,52±12,47
р1,2=0,0006
p1,5=0,0004
p1,7=0,0001
p1,9=0,0000</td><td>175,59±30,08</td><td>44,87±10,45
p3,5=0,001
p3,7=0,0008
p3,9=0,001</td><td>150,50±60,99</td><td>132,63±15,07
p5,9=0,0002</td><td>154,46±17,53</td><td>156,38±26,50
p7,9=0,02</td><td>186,00±32,92</td><td>370,75±122,43</td><td>264,00±46,28</td></tr><tr><td>NK-лимфоциты (CD45+CD3-16+56+), %
NK-lymphocytes (CD45+CD3-16+56+), %</td><td>12,56±1,56
p1,9=0,009</td><td>15,68±1,91</td><td>8,38±3,05
p3,9=0,009</td><td>12,05±2,58</td><td>10,93±1,48
p5,9=0,003</td><td>12,35±1,41</td><td>9,08±1,60
p7,9=0,001</td><td>9,75±2,19</td><td>22,78±3,90</td><td>16,53±3,42</td></tr><tr><td>NK-лимфоциты (CD45+CD3- 16+56+), 10⁶ кл/л
NK-lymphocytes (CD45+CD3-16+56+), 10⁶ cells/l</td><td>186,64±37,61
р1,2=0,006
p1,9=0,0001</td><td>413,32±77,25</td><td>134,75±47,91
p3,5=0,047
p3,9=0,0002</td><td>263,75±63,04</td><td>223,63±25,16
р5,6=0,028
p5,9=0,0001</td><td>360,08±64,87</td><td>222,25±44,48
p7,9=0,004</td><td>307,13±125,38</td><td>900,50±197,99</td><td>571,75±175,78</td></tr><tr><td>T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+CD25+ (ранняя активация), %
T-lymphocytes CD45+CD3+CD4+CD25+ (early activation), %</td><td>8,37±0,56</td><td>7,97±0,62</td><td>8,35±0,68</td><td>11,55±2,00</td><td>8,0±0,68
р5,6=0,049</td><td>6,87±0,48</td><td>6,83±0,74</td><td>5,25±1,17</td><td>6,70±0,92</td><td>7,18±1,00</td></tr><tr><td>T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+CD25+ (ранняя активация), 10⁶ кл/л
T-lymphocytes CD45+CD3+CD4+CD25+ (early activation), 10⁶ cells/l</td><td>56,09±6,45</td><td>86,05±7,86</td><td>69,88±11,80</td><td>96,75±11,81</td><td>85,38±10,02</td><td>87,048±10,22</td><td>72,75±7,45</td><td>63,12±15,81</td><td>79,75±8,60</td><td>95,50±18,12</td></tr><tr><td>T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+HLA DR+ (поздняя активация), %
T-lymphocytes CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (late activation), %</td><td>6,10±0,56</td><td>5,51±0,68</td><td>7,58±0,92</td><td>5,23±1,20</td><td>6,68±0,44</td><td>5,65±0,82</td><td>5,00±1,61</td><td>4,44±1,37</td><td>10,28±2,86</td><td>10,58±0,85</td></tr><tr><td>T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (поздняя активация), 10⁶ кл/л
T-lymphocytes CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (late activation), 10⁶ cells/l</td><td>39,18±4,34
р1,2=0,016
р1,3=0,022
р1,5=0,0001
р1,9=0,0001</td><td>58,27±7,42</td><td>56,00±5,59
р3,9=0,007</td><td>44,88±10,09</td><td>66,00±4,71
р5,9=0,0009</td><td>71,38±13,43</td><td>55,25±18,89
р7,9=0,039</td><td>56,88±20,44</td><td>122,75±30,99</td><td>137,25±20,25</td></tr><tr><td>Т-регуляторные клетки (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127-), %
T-regulatory cells (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127-), %</td><td>3,27±0,39
p1,3=0,004
p1,7=0,026</td><td>4,01±0,51</td><td>5,49±0,72
p3,4=0,048
p3,5=0,0006
p3,7=0,0002
p3,9=0,003</td><td>3,18±1,15</td><td>3,10±0,31
р5,7=0,020
p5,9=0,048</td><td>2,76±0,41</td><td>1,90±0,29</td><td>1,51±0,41</td><td>1,75±0,50</td><td>2,20±0,29</td></tr><tr><td>Т-регуляторные клетки (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127),10⁶ кл/л
T-regulatory cells (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127-), 10⁶ cells/l</td><td>22,64±3,56
р1,2=0,001
p1,3=0,006</td><td>41,55±4,60</td><td>42,75±7,97
р3,4=0,020
p3,7=0,008
p3,9=0,045</td><td>22,13±4,35</td><td>31,96±4,73</td><td>33,92±6,43</td><td>19,7±2,37</td><td>17,88±4,24</td><td>20,25±4,75</td><td>29,50±7,63</td></tr><tr><td>Т-регуляторные клетки поздняя активация (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127-HLA-DR+), %
T-regulatory cells late activation (CD 45+CD3+CD4+CD25+CD127-HLA-DR+), %</td><td>1,13±0,21
p1,3=0,004</td><td>1,09±0,15</td><td>2,29±0,31
p3,4=0,013
p3,5=0,0001
p3,7=0,0004
p3,9=0,0016</td><td>0,91±0,46</td><td>1,09±0,13
p5,7=0,049
p5,9=0,049</td><td>0,98±0,21</td><td>0,66±0,22</td><td>0,45±0,16</td><td>0,53±0,06</td><td>0,75±0,18</td></tr><tr><td>Т-регуляторные клетки поздняя активация (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127-HLA-DR+) абс.
T-regulatory cells late activation (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127-HLA-DR+) 10⁶ cells/l</td><td>6,95±1,19
p1,2=0,010
p1,3=0,0002
h1,5=0,025</td><td>12,41±1,92</td><td>17,38±2,71
p3,4=0,0009
p3,5=0,006
p3,7=0,004
p3,9=0,01</td><td>5,63±1,37</td><td>10,38±1,21</td><td>12,83±2,63</td><td>6,51±2,18</td><td>5,50±2,14</td><td>6,50±0,65</td><td>11,25±3,97</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Исходя из данных таблицы, обращает на себя внимание наименьший % Т-лимфоцитов (CD45+CD3+CD19-) у пациентов с исходно высокими CD3+CD8+ T-клетками, болевших COVID-19, и этот показатель достоверно отличался от других групп. В то же время абсолютное число Т-лимфоцитов было минимальным в группе лиц, болевших ранее COVID-19 и имевших низкие CD3+CD8+ T-лимфоциты, и оно статическим значимо было ниже в сопоставлении с другими группами. В динамике через 28 дней количество Т-лимфоцитов значимо (р&lt;0,0001) повысилось только у больных с исходно низкими CD3+CD8+ T-лимфоцитами. Также у данной категории лиц исходно регистрировалось наименьшее число Т-хелперов, в динамике произошло статистически значимое их увеличение (р&lt;0,001), как и CD3+CD8+ T-лимфоцитов (р&lt;0,0001). Достоверное повышение иммунорегуляторного индекса в динамике произошло у больных с повышенными CD3+CD8+ T-лимфоцитами (р&lt;0,05). У пациентов с высокими CD3+CD8+ T-клетками исходно отмечался минимальный индекс соотношения CD4/CD8 и достоверно отличался от других групп.</p><p>Наименьшие уровни T-NK-лимфоцитов наблюдались у лиц с пониженными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, как болевших, так и не болевших COVID-19, и достоверно отличались от других групп.</p><p>В динамике имелась тенденция к повышению T-NK-лимфоцитов, за исключением пациентов с высокими CD3+CD8+ T-лимфоцитами, у которых отмечалась склонность к снижению T-NK-клеток. Что касается натуральных киллеров, то следует отметить, что достоверное повышение этого показателя в динамике наблюдалось у больных с исходно низкими и нормальными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, болевших COVID-19. Максимальное значение NK-лимфоцитов было у лиц с высокими CD3+CD8+ T-лимфоцитами и имело тенденцию к снижению в динамике в отличие от других групп.</p><p>Т-лимфоциты ранней активации в относительном плане достоверно (p&lt;0,05) снизились у больных с нормальными CD3+CD8+ T-лимфоцитами, перенёсших COVID-19. Т-лимфоциты поздней активации были минимальными у лиц с низкими CD3+CD8+T- лимфоцитами и достоверно повысились в динамике. Максимальное число Т-лимфоцитов поздней активации отмечалось у пациентов с высокими CD3+CD8+ T-лимфоцитами, переболевших COVID-19. Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации значимо (p&lt;0,01) выросли в динамике у больных с исходно низкими CD3+CD8+ T- клетками, болевших COVID-19, и достоверно снизились у пациентов без COVID-19 в анамнезе.</p><p>В таблице 2 представлены данные гуморального иммунитета исходно и в динамике у пациентов с ОКС, перенёсших и не болевших COVID-19.</p><table-wrap id="table-2"><caption><p>Таблица/Table 2</p><p>Динамические показатели гуморального звена иммунитета у больных с острым коронарным синдромом в зависимости от числа CD3+CD8+ T-лимфоцитов, болевших и не болевших COVID-19</p><p>Dynamic indicators of humoral immunity in patients with acute coronary syndrome depending on the number of CD3+CD8+ T-lymphocytes who have and have not had COVID-19</p><p>Примечание: р — достоверность различий, первая и вторая цифра после р обозначают, какие группы сравнивались.</p><p>Note: p — significance of differences, the first and second digit after p indicate which groups were compared.</p></caption><table><tbody><tr><td>Показатель
Index</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td><td>Не болевшие COVID-19
Not sick with COVID-19</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td><td>Не болевшие COVID-19
Not sick with COVID-19</td><td>Болевшие COVID-19
Sick with COVID-19</td></tr><tr><td>CD3+CD8+ T-клетки
CD3+CD8+ T-cells</td><td>Группа I — исходно CD3+CD8+ T-клетки пониженные (n=22)
Group 1 — initially CD3+CD8+ T-cells downgraded (n=22)</td><td>Группа II — в динамике пациенты с исходно пониженными CD3+CD8+ T-клетками(n=22)
Group 2 — in dynamics patients with initially low CD3+CD8+ T-cells(n=22)</td><td>Группа III — исходно CD3+CD8+ T-клетки пониженные (n=7)
Group 1 — initially CD3+CD8+ T-cells downgraded (n=7)</td><td>Группа IV — в динамике пациенты с исходно пониженными CD3+CD8+ T-клетками(n=7)
Group 2 — in dynamics patients with initially low CD3+CD8+ T-cells(n=7)</td><td>Группа V — исходно нормальные CD3+CD8+ T-клетки (n=24)
Group 5 — initially CD3+CD8+ T- cells normal(n=24)</td><td>Группа VI — в динамике пациенты с исходно нормальными CD3+CD8+ T-клетками(n=24)
Group 6 — in dynamics patients with initially normal CD3+CD8+ T-cells(n=24)</td><td>Группа VII — исходно CD3+CD8+ T-клетки нормальные (n=8)
Group 5 — initially CD3+CD8+ T-cells normal(n=8)</td><td>Группа VIII — в динамике пациенты с исходно нормальными CD3+CD8+ T-клетками(n=8)
Group 8 — in dynamics patients with initially normal CD3+CD8+ T-cells(n=8)</td><td>Группа IX — исходно CD3+CD8+ T-клетки повышенные (n=4)
Group 9 — initially CD3+CD8+ T-cells elevated(n=4)</td><td>Группа X — в динамике пациенты с исходно повышенными CD3+CD8+ T-клетками(n=4)
Group 10 — in dynamics patients with initially elevated CD3+CD8+ T-cells(n=4)</td></tr><tr><td>B-лимфоциты (CD45+CD3- CD19+), %
B-lymphocytes (CD45+CD3-CD19+), %</td><td>12,5±1,21
р1,2=0,022</td><td>9,24±0,99</td><td>15,1±2,44</td><td>16,38±4,01</td><td>12,45±1,11
р5,7=0,049</td><td>10,95±1,05</td><td>16,85±3,13</td><td>13,2±2,96</td><td>10,08±3,41</td><td>10,68±4,01</td></tr><tr><td>B-лимфоциты (CD45+CD3- CD19+), 10 6 кл/л
B-lymphocytes (CD45+CD3-CD19+), 10⁶ cells/l</td><td>161,95±23,49
р1,2=0,049
р1,3=0,021
р1,5=0,002
р1,7=0,0002
р1,9=0,003</td><td>218,05±24,03</td><td>283,87±70,43</td><td>332,25±96,05</td><td>279,04±29,92
р5,7=0,019</td><td>292,58±32,74</td><td>446,63±102,99</td><td>364,25±102,97</td><td>390,5±133,92</td><td>307,75±65,99</td></tr><tr><td>Иммуноглобулин А общий, г/л
Immunoglobulin А, total, g/l</td><td>1,76±0,23</td><td>1,40±0,19</td><td>1,17±0,21
р3,5=0,042
р3,7=0,049</td><td>1,59±0,40</td><td>1,89±0,22
р5,9=0,044</td><td>1,83±0,21</td><td>2,06±0,47</td><td>1,63±0,29</td><td>0,91±0,13
р9,10=0,017</td><td>1,84±0,31</td></tr><tr><td>Иммуноглобулин M общий, г/л
Immunoglobulin M, total, g/l</td><td>0,63±0,16
р1,7=0,044</td><td>0,67±0,21</td><td>0,61±0,19</td><td>0,98±0,39</td><td>0,53±0,10
р5,7=0,024</td><td>0,59±0,08</td><td>1,52±0,72</td><td>2,16±1,35</td><td>0,52±0,24
р9,10=0,041</td><td>1,11±0,39</td></tr><tr><td>Иммуноглобулин G общий, г/л
Immunoglobulin G, total, g/l</td><td>14,37±1,15
р1,2=0,015
р1,3=0,016
р1,9=0,021</td><td>10,80±1,11</td><td>9,77±1,12
р3,5=0,049</td><td>10,94±1,56</td><td>13,37±1,23
р5,9=0,049</td><td>13,11±0,98</td><td>11,40±0,97</td><td>10,46±0,89</td><td>8,21±2,20</td><td>16,03±3,06</td></tr><tr><td>C1 ингибитор
C1 inhibitor</td><td>227,81±30,72</td><td>224,65±16,98</td><td>226,18±17,03</td><td>294,39±38,16</td><td>190,98±15,75</td><td>214,81±15,96</td><td>243,79±67,84</td><td>326,86±78,92</td><td>246,83±56,10</td><td>273,12±52,81</td></tr><tr><td>C3a фрагмент комплемента, нг/мл
C3a complement fragment, ng/ml</td><td>154,11±10,13
р1,5=0,037</td><td>155,82±6,21</td><td>142,32±14,35</td><td>152,59±13,47</td><td>131,43±7,36</td><td>145,11±7,32</td><td>148,47±14,64</td><td>144,94±13,54</td><td>144,33±9,20</td><td>144,45±20,64</td></tr><tr><td>C5a фрагмент комплемента, нг/мл
C5a complement fragment, ng/ml</td><td>54,91±4,18
р1,2=0,032</td><td>44,58±3,50</td><td>44,34±7,39</td><td>62,01±9,48</td><td>44,52±5,05</td><td>43,93±4,30</td><td>42,86±11,85</td><td>45,04±6,52</td><td>38,20±8,12</td><td>35,70±5,29</td></tr><tr><td>В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5+), %
B-lymphocytes, (CD3-CD19+CD5+), %</td><td>2,07±0,39
р1,7=0,021</td><td>1,92±0,47</td><td>2,33±0,55</td><td>3,43±1,08</td><td>2,60±0,56</td><td>3,11±0,53</td><td>4,54±1,63</td><td>4,93±2,16</td><td>1,95±1,20</td><td>4,38±3,64</td></tr><tr><td>В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5+), 10⁶ кл/л
B-lymphocytes, (CD3-CD19+CD5+), 10⁶ cells/l</td><td>23,59±3,77
р1,2=0,026
р1,3=0,027
р1,5=0,015
р1,7=0,002
р1,9=0,008</td><td>42,86±8,88</td><td>47,00±16,80</td><td>66,88±22,51</td><td>61,21±15,71
р5,7=0,048</td><td>80,63±12,81</td><td>133,75±57,59</td><td>167,75±83,71</td><td>74,75±45,73</td><td>104,25±76,69</td></tr><tr><td>В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5-), %
B-lymphocytes, (CD3-CD19+CD5-), %</td><td>10,43±1,04
р1,2=0,016</td><td>7,32±0,93</td><td>12,78±2,08</td><td>12,95±3,63</td><td>9,85±1,03</td><td>7,85±0,98</td><td>12,34±2,98</td><td>8,27±2,09</td><td>8,13±2,38</td><td>6,33±0,64</td></tr><tr><td>В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5-), 10⁶ кл/л
B-lymphocytes, (CD3-CD19+CD5-), 10⁶ cells/l</td><td>138,32±21,00
р1,3=0,024
р1,5=0,012
р1,7=0,005
р1,9=0,004</td><td>173,95±109,42</td><td>236,87±55,33</td><td>265,38±90,18</td><td>217,87±26,41</td><td>212,13±29,94</td><td>313,63±88,76</td><td>196,0±34,13</td><td>316,25±96,71</td><td>204,75±26,51</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Минимальное значение В-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) отмечалось у больных с низкими CD3+CD8+ T-лимфоцитами, болевших ранее COVID-19, статистически значимо отличавшихся от других групп, и в динамике достоверно (p&lt;0,05) увеличилось. Наименьшее количество Jg A регистрировалось у пациентов с повышенными CD3+CD8+T-лимфоцитами. Максимальное значение Jg G отмечалось у больных с низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами, перенёсших COVID-19, и в динамике статистически значимо (p&lt;0,05) уменьшилось. Наиболее высокие уровни С5а фрагмента комплемента регистрировались у больных со сниженными CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевших COVID-19, и достоверно (p&lt;0,05) увеличилось в динамике. В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5+) имели наименьшие значения у лиц с пониженными цитотоксическими клетками и статистически значимо (p&lt;0,05) выросли у больных со сниженными CD3+CD8+T-лимфоцитами, перенёсших COVID-19. Минимальный уровень В-лимфоцитов (CD3-CD19+CD5-) фиксировался у пациентов с низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами.</p></sec><sec><title>Обсуждение</title><p>Несмотря на раннюю реперфузию, у пациентов с инфарктом миокарда с подъёмом сегмента ST (ИМпST) может наблюдаться обширный некроз миокарда и значительное нарушение функции желудочков. Исследование Casarotti A.C.A. et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>] было направлено на оценку роли подтипов B-лимфоцитов и родственных цитокинов в инфарктной массе и фракции выброса левого желудочка, полученных с помощью магнитно-резонансной томографии сердца, выполненной через 30 дней ОИМ с пST. В это проспективное исследование были включены 120 пациентов с ОИМпST, которым применяли фармакоинвазивную стратегию. Образцы крови были собраны у субъектов в первый и 30-й дни после ОИМ с пST. Количество CD3-CD19+CD5+-лимфоцитов (клеток/мл) в 1-й день было связано с инфарктной массой, измеренной с помощью МРТ сердца на 30-й день. CD3-CD19+CD5+-клетки были связаны с CD4+ Т-лимфоцитами на 1-й и 30-й дни, тогда как классические лимфоциты CD3-CD19+CD5- на 30-й день были связаны с фракцией выброса левого желудочка. После множественного линейного регрессионного анализа высокочувствительные тропонин Т и IL-6, собранные в первый день, были независимыми предикторами инфарктной массы, а на 30-й день — только уровень холестерина ЛПВП. Что касается ФВЛЖ, то высокочувствительный тропонин Т и высокочувствительный С-реактивный белок были независимыми предикторами на 1-й день, а классические лимфоциты CD3-CD19+CD5- на 30-й день. У пациентов с ИМпST, несмотря на раннюю реперфузию, количество инфарктной массы и работоспособность желудочков были связаны с воспалительными реакциями, запускаемыми циркулирующими В-лимфоцитами.</p><p>Наиболее тяжёлая клиническая группа в нашем исследовании была болевшие ранее COVID-19 с повышенным содержанием CD3+CD8+ T-лимфоцитов. Это согласуется с работой Santos-Zas I et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. После острого инфаркта миокарда у мышей CD8+ Т-лимфоциты рекрутируются и активируются в ишемизированной ткани сердца и высвобождают гранзим В, что приводит к апоптозу кардиомиоцитов, неблагоприятному ремоделированию желудочков и ухудшению функции миокарда. Истощение CD8+ Т-лимфоцитов уменьшает апоптоз в ишемизированном миокарде, препятствует воспалительной реакции, ограничивает повреждение миокарда и улучшает функцию сердца. Эти эффекты повторяются у мышей с дефицитом гранзима В CD8+ Т-клетках. Защитный эффект истощения CD8+ Т-клеток на функцию сердца подтверждён использованием модели ишемии/реперфузии у свиней. Наконец, мы показываем, что повышенные уровни гранзима В в крови у пациентов с острым инфарктом миокарда предсказывают повышенный риск смерти при 1-летнем наблюдении. Работа раскрывает вредную роль CD8 + Т-лимфоцитов после острой ишемии и предлагает потенциальные терапевтические стратегии, нацеленные на патогенные CD8 + Т-лимфоциты в условиях острого инфаркта миокарда.</p></sec><sec><title>Выводы</title><p>В большинстве случаев после стентирования коронарных артерий в динамике отмечались статистически значимые изменения большинства иммунологических показателей у лиц со сниженными CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевших COVID-19: повышение T-лимфоцитов (CD45+CD3+CD19-), Т-хелперов, CD3+CD8+T-лимфоцитов, T-NK лимфоцитов, NK-лимфоцитов, Т-лимфоцитов поздней активации, В-лимфоцитов, снижение иммуноглобулина G и C3a фрагмент комплемента.</p><p>Т-регуляторные лимфоциты и Т-регуляторные клетки поздней активации значимо (p&lt;0,01) выросли в динамике у больных с исходно низкими CD3+CD8+T-лимфоцитами, болевших COVID-19, и достоверно снизились у пациентов без COVID-19 в анамнезе.</p><p>У лиц с нормальными CD3+CD8+T-лимфоцитами, переболевших COVID-19, в динамике наблюдалось достоверное повышение T-лимфоцитов (CD45+CD3+ CD19-), NK-лимфоцитов, Т-лимфоцитов поздней активации, снижение относительного содержания T-лимфоцитов ранней активации.</p><p>У больных с повышенными CD3+CD8+T-лимфоцитами в динамике произошло увеличение иммуноглобулинов А и М, а также индекса соотношения CD4/CD8.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Li D, Gao S. The interplay between T lymphocytes and macrophages in myocardial ischemia/reperfusion injury. Mol Cell Biochem. 2023. Epub ahead of print. PMID: 37540399. https://doi.org/10.1007/s11010-023-04822-z.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Li D, Gao S. The interplay between T lymphocytes and macrophages in myocardial ischemia/reperfusion injury. Mol Cell Biochem. 2023. Epub ahead of print. PMID: 37540399. https://doi.org/10.1007/s11010-023-04822-z.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Добрынина М.А., Зурочка А.В., Комелькова М.В., Ло Ш., Зурочка В.А. и др. Исследование экспрессии CD45+ и CD46+ на субпопуляциях лимфоцитов периферической крови постковидных пациентов. Российский иммунологический журнал. 2022;25(4):431-436.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dobrynina M.A., Zurochka A.V., Komelkova M.V., Lo Sh., Zurochka V.A. et al. Studies of CD45+ and CD46+ expression on the peripheral blood lymphocyte subsets of the post-COVID patients. Russian Journal of Immunology. 2022;25(4):431-436. (In Russ.). https://doi.org/10.46235/1028-7221-1160-SOC</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Добрынина М.А., Ибрагимов Р.В., Крицкий И.С., Верховская М.Д., Мосунов А.А., и др. Постковидный синдром иммунопатологии. Характеристика фенотипических изменений иммунной системы у постковидных пациентов. Медицинская иммунология. 2023;25(4):791-796.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dobrynina M.A., Ibragimov R.V., Kritsky I.S., Verkhovskaya M.D., Mosunov A.A., et al. Post-COVID immunopatology syndrome: characteristics of phenotypical changes in the immune system in post-COVID patients. Medical Immunology (Russia). 2023;25(4):791-796. https://doi.org/10.15789/1563-0625-PCI-2707</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Del Prete A, Conway F, Della Rocca DG, Biondi-Zoccai G, De Felice F, et al. COVID-19, Acute Myocardial Injury, and Infarction. Card Electrophysiol Clin. 2022;14(1):29-39. https://doi.org/10.1016/j.ccep.2021.10.004</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Del Prete A, Conway F, Della Rocca DG, Biondi-Zoccai G, De Felice F, et al. COVID-19, Acute Myocardial Injury, and Infarction. Card Electrophysiol Clin. 2022;14(1):29-39. https://doi.org/10.1016/j.ccep.2021.10.004</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tajbakhsh A, Gheibi Hayat SM, Taghizadeh H, Akbari A, et al. COVID-19 and cardiac injury: clinical manifestations, biomarkers, mechanisms, diagnosis, treatment, and follow up. Expert Rev Anti Infect Ther. 2021;19(3):345-357. https://doi.org/10.1080/14787210.2020.1822737.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tajbakhsh A, Gheibi Hayat SM, Taghizadeh H, Akbari A, et al. COVID-19 and cardiac injury: clinical manifestations, biomarkers, mechanisms, diagnosis, treatment, and follow up. Expert Rev Anti Infect Ther. 2021;19(3):345-357. https://doi.org/10.1080/14787210.2020.1822737.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Raman B, Bluemke DA, Lüscher TF, Neubauer S. Long COVID: post-acute sequelae of COVID-19 with a cardiovascular focus. Eur Heart J. 2022;43(11):1157-1172. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehac031</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Raman B, Bluemke DA, Lüscher TF, Neubauer S. Long COVID: post-acute sequelae of COVID-19 with a cardiovascular focus. Eur Heart J. 2022;43(11):1157-1172. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehac031</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zuin M, Rigatelli G, Battisti V, Costola G, Roncon L, Bilato C. Increased risk of acute myocardial infarction after COVID-19 recovery: A systematic review and meta-analysis. Int J Cardiol. 2023;372:138-143. https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2022.12.032</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zuin M, Rigatelli G, Battisti V, Costola G, Roncon L, Bilato C. Increased risk of acute myocardial infarction after COVID-19 recovery: A systematic review and meta-analysis. Int J Cardiol. 2023;372:138-143. https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2022.12.032</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Azevedo RB, Botelho BG, Hollanda JVG, Ferreira LVL, Junqueira de Andrade LZ, et al. Covid-19 and the cardiovascular system: a comprehensive review. J Hum Hypertens. 2021;35(1):4-11. https://doi.org/10.1038/s41371-020-0387-4</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Azevedo RB, Botelho BG, Hollanda JVG, Ferreira LVL, Junqueira de Andrade LZ, et al. Covid-19 and the cardiovascular system: a comprehensive review. J Hum Hypertens. 2021;35(1):4-11. https://doi.org/10.1038/s41371-020-0387-4</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Савчук К.С. Особенности Т-клеточного звена иммунитета и уровень натуральных киллеров у больных, перенесших COVID-19 с нарушениями углеводного обмена. Медицинская иммунология. 2023;25(4):797-802.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Savchuk K.S. Characteristics of T-cell immunity and level of the natural killer cells content in COVID-19 convalescents with carbohydrate metabolism disorders. Medical Immunology (Russia). 2023;25(4):797-802. https://doi.org/10.15789/1563-0625-COT-2848</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Савчук К.С., Рябова Л.В. Состояние функциональной активности нейтрофилов у больных с различными вариантами нарушений углеводного обмена, перенесших SARSCoV-2. Вестник Уральской медицинской академической науки. 2022;3:315-321.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Savchuk K.S., Ryabova L.V. The state of functional activity of neutrophils in patients with various types of carbohydrate metabolism disorders who have had SARS-CoV-2. Bulletin of the Ural Medical Academic Science. 2022;3:315-321. (In Russ.). https://doi.org/10.22138/2500-0918-2022-19-3-315-321</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang L, Wang Z, Wang D, Zhu J, Wang Y. CD8+CD28+ T cells might mediate injury of cardiomyocytes in acute myocardial infarction. Mol Immunol. 2018;101:74-79. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2018.05.015</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang L, Wang Z, Wang D, Zhu J, Wang Y. CD8+CD28+ T cells might mediate injury of cardiomyocytes in acute myocardial infarction. Mol Immunol. 2018;101:74-79. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2018.05.015</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН; 2018.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in biomedical research. Yekaterinburg: RIO Ural Branch of the Russian Academy of Sciences; 2018. (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Хайдуков С.В., Байдун Л.А., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизованная технология «Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» (проект). Медицинская иммунология. 2012;14(3):255-268.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Khaydukov S., Baidun L., Zurochka A., Totolyan A. Methods. Standardized technology “Study of the subpopulation composition of peripheral blood lymphocytes using flow cytofluorimeter analyzers. Medical Immunology (Russia). 2012;14(3):255-268. (In Russ.) https://doi.org/10.15789/1563-0625-2012-3-255-268</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Маянский А.Н., Пазюк Е.А., Макарова Т. П., Паршакова Р.А., Пикуза О.И. Механизм и диагностические возможности реакции восстановления нитросинего тетразолия нейтрофилами человека. Казанский медицинский журнал. 1981;62(4):64-68.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mayansky A.N., Pazyuk E.A., Makarova T.P., Parshakova R.A., Pikuza O.I. Mechanism and diagnostic capabilities of the reaction of reduction of nitroblue tetrazolium by human neutrophils. Kazan Medical Journal. 1981;62(4):64-68. (In Russ.). EDN NGWVRW. eLIBRARY ID: 42423822.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Маянский, А.Н., Пикуза О.И. Клинические аспекты фагоцитоза. Казань: Магариф; 1993.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mayansky, A.N., Pikuza O.I. Clinical aspects of phagocytosis. Kazan: Magarif; 1993. (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Фрейдлин И. С. Методы изучения фагоцитирующих клеток при оценке иммунного статуса человека: Учеб. пособие. Л.; 1986.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Freidlin I. S. Methods for studying phagocytic cells in assessing the immune human status: Proc. allowance. Leningrad; 1986. (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Маркина Н. В., Степнова О. А., Шамаева Т. Н. Учебное пособие по статистической обработке медико-биологических данных. Челябинск; 2014.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Markina N.V., Stepnova O.A., Shamaeva T.N. Textbook on statistical processing of medical and biological data. Chelyabinsk; 2014. 107 p. (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Casarotti ACA, Teixeira D, Longo-Maugeri IM, Ishimura ME, Coste MER, et al. Role of B lymphocytes in the infarcted mass in patients with acute myocardial infarction. Biosci Rep. 2021;41(2):BSR20203413. https://doi.org/10.1042/BSR20203413</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Casarotti ACA, Teixeira D, Longo-Maugeri IM, Ishimura ME, Coste MER, et al. Role of B lymphocytes in the infarcted mass in patients with acute myocardial infarction. Biosci Rep. 2021;41(2):BSR20203413. https://doi.org/10.1042/BSR20203413</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Santos-Zas I, Lemarié J, Zlatanova I, Cachanado M, Seghezzi JC, et al. Cytotoxic CD8+ T cells promote granzyme B-dependent adverse post-ischemic cardiac remodeling. Nat Commun. 2021;12(1):1483. https://doi.org/10.1038/s41467-021-21737-9</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Santos-Zas I, Lemarié J, Zlatanova I, Cachanado M, Seghezzi JC, et al. Cytotoxic CD8+ T cells promote granzyme B-dependent adverse post-ischemic cardiac remodeling. Nat Commun. 2021;12(1):1483. https://doi.org/10.1038/s41467-021-21737-9</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
