<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">mvjr</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Медицинский вестник Юга России</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Medical Herald of the South of Russia</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2219-8075</issn><issn pub-type="epub">2618-7876</issn><publisher><publisher-name>The Rostov State Medical University</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.21886/2219-8075-2020-11-3-48-53</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">mvjr-1088</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL ARTICLES</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Молекулярно-генетический анализ SARS-CoV-2  бессимтомных пациентов Ростовской области</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Molecular genetic analysis SARS-CoV-2 of asymptomatic patients in Rostov region</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-7070-3209</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Перевезенцев</surname><given-names>О. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Perevesentsev</surname><given-names>O. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Перевезенцев Олег Александрович, кандидат медицинских наук, ассистент кафедры персонализированной и трансляционной медицины</p><p>Ростов-на-Дону</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Oleg A. Perevesentsev, Cand. Sci. (Med.), assist.of department of personalized and translational medicine</p><p>Rostov-on-Don</p></bio><email xlink:type="simple">PZPO@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Холодная</surname><given-names>Т. О.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Cholodnaja</surname><given-names>T. O.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Холодная Татьяна Олеговна, кандидат медицинских наук, ассистент кафедры персонализированной и трансляционной медицины</p><p>Ростов-на-Дону</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Tatjiana O. Cholodnaja, Сand. Sci. (Med.), assist.of department of personalized and translational medicine</p><p>Rostov-on-Don</p></bio><email xlink:type="simple">tatiana_holodnaya@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Новикова</surname><given-names>Е. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Novikova</surname><given-names>E. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Новикова Екатерина Александровна, ассистент кафедры персонализированной и трансляционной медицины</p><p>Ростов-на-Дону</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Ekaterina А. Novikova, assist. of department of personalized and translational medicine</p><p>Rostov-on-Don</p></bio><email xlink:type="simple">eanovikova01@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Самсонов</surname><given-names>А. Е.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Samsonov</surname><given-names>A. E.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Самсонов Андрей Евгеньевич, доцент кафедры персонализированной и трансляционной медицины</p><p>Ростов-на-Дону</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Andrei E. Samsonov, docent of department of personalized and translational medicine</p><p>Rostov-on-Don</p></bio><email xlink:type="simple">drsamsonov@bk.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Бурцев</surname><given-names>Д. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Burtsev,</surname><given-names>D. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Бурцев Дмитрий Владимирович, доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой персонализированной и трансляционной медицины</p><p>Ростов-на-Дону</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Dmitrii V. Burtsev, Dr. Sci. (Med.), Docent, head of department of personalized and translational medicine</p><p>Rostov-on-Don</p></bio><email xlink:type="simple">dr-burtsev@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Ростовский Государственный Медицинский Университет;&#13;
Областной консультативно-диагностический центр</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Rostov State Medical University;&#13;
Regional consulting and diagnostic center</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>Ростовский Государственный Медицинский Университет; &#13;
Областной консультативно-диагностический центр</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Rostov State Medical University;&#13;
Regional consulting and diagnostic center</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2020</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>25</day><month>09</month><year>2020</year></pub-date><volume>11</volume><issue>3</issue><fpage>48</fpage><lpage>53</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Перевезенцев О.А., Холодная Т.О., Новикова Е.А., Самсонов А.Е., Бурцев Д.В., 2020</copyright-statement><copyright-year>2020</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Перевезенцев О.А., Холодная Т.О., Новикова Е.А., Самсонов А.Е., Бурцев Д.В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Perevesentsev O.A., Cholodnaja T.O., Novikova E.A., Samsonov A.E., Burtsev, D.V.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1088">https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1088</self-uri><abstract><sec><title>Цель</title><p>Цель: провести молекулярно-генетическую диагностику SARS-CoV-2 у бессимптомных индивидуумов Ростовской области.</p></sec><sec><title>Материал и методы</title><p>Материал и методы: было обследовано 22037 индивидуумов, которые на момент сдачи материала не имели клинически выраженных симптомов респираторного заболевания COVID-19. Молекулрно-генетическая диагностика SARS-CoV-2 проводилась методами RT-PCR и изотерической амплификации с ручным и автоматическим выделением вирусной РНК.</p></sec><sec><title>Результаты</title><p>Результаты: положительный результат был выявлен у 297 индивидуумов, подтверждён результат региональным референсным центром у 149 человек (0.68 %). Среди общей выборки было обследовано 3090 «контактных» пациентов (положительный результат — в 78 случаях (2.52 %)), 8109 медицинских работников (положительный результат – в 23 случаях (0.28 %)) и 3098 «контактных» медработников (положительный результат — в 24 случаях (0.77 %)).</p></sec><sec><title>Выводы</title><p>Выводы: применение молекулярно-генетического тестирования SARS-CoV-2 для выявления асимптомных случаев имеет серьёзные ограничения, поэтому для данной диагностической задачи необходима разработка альтернативных методов лабораторной диагностики, основанной на особенностях этиопатогенеза новой коронавирусной инфекции.</p></sec></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><sec><title>Objective</title><p>Objective: conduct molecular genetics diagnosis of SARS-CoV-2 in asymptomatic individuals in the Rostov region.</p></sec><sec><title>Material and methods</title><p>Material and methods: 22037 individuals who at the time of delivery of the material did not have clinically expressed symptoms of respiratory disease COVID-19 were examined. Molecular genetics diagnosis of SARS-CoV-2 was carried out by RT-PCR and LAMP with manual and automatic isolation of viral RNA.</p></sec><sec><title>Results</title><p>Results: a positive result would be detected in 297 individuals, the result would be confirmed by the regional reference center in 149 people (0.68 %). Among the total sample, 3090 “contact” patients were examined (78 people, or 2.52 %) found positive results, 8109 medical workers (23 cases positive, or 0.28 %) and 3098 “contact” health workers (24 cases positive, or 0.77 %).</p></sec><sec><title>Conclusions</title><p>Conclusions: based on the results obtained, it can be concluded that the use of molecular genetic testing of SARS-CoV-2 for the detection of asymptomatic cases has serious limitations, therefore, for this diagnostic task, it is necessary to develop alternative laboratory diagnostic methods based on the features of the etiopathogenesis of a new coronavirus infection.</p></sec></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>SARS-CoV-2</kwd><kwd>COVID19</kwd><kwd>бессимптомная инфекция</kwd><kwd>ПЦР</kwd><kwd>LAMP</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>SARS-CoV-2</kwd><kwd>COVID19</kwd><kwd>asymptomatic infection</kwd><kwd>PCR</kwd><kwd>LAMP</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">За счёт ГАУ РО Областной консультативно-диагностический центр</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><sec><title>Введение</title><p>Коронавирусы (СoV) (Coronoviridae) — это семейство вирусов, содержащих в качестве генетического материала одноцепочечную (+) РНК, со специфическими гликопротеидными шипами (спайками) вокруг вирусного капсида, которые при электронном микрокопировании похожи на солнечную корону [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Семейство коронавирусов делится на несколько подсемейств, включающих четыре рода (от альфа- до дельта-), которые потенциально патогенны для различных видов млекопитающих, включая человека [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. За последние 20 лет кроме ранее известных четырёх видов коронавирусов у человека, входящих в структуру сезонных ОРВИ, были описаны новые более патогенные виды данного семейства: SARS-CoV (подрод Sarbecovirus), описанный в 2002 г., который в 2002-2003 гг. стал причиной вспышки атипичной пневмонии (тяжелый острый респираторный синдром — ТОРС, SARS) в Китае; MERS-CoV (подрод Merbecovirus), который 2012 г. вызвал вспышку ближневосточного респираторного синдрома в Саудовской Аравии и в 2015 г. — в Южной Корее (MERS), и новый коронавирус SARSCoV-2 (как и вирус атипичной пневмонии, относящийся к подроду Sarbecovirus), который вызвал вспышку болезни, названной COVID19, в китайской провинции Ухань, перешедшей в настоящее время в глобальную пандемию1. Достаточно высокая степень передачи нового коронавируса (среднее медианное значение индекса репродукции — 2.2, разброс — 3.3-5.47), его способность, в отличие от вируса SARS-CoV, передаваться от человек к человеку и потенциальная тяжесть последствий заболевания СOVID-19, вызываемого данным вирусом, превратили его в главнейшую медицинскую проблему 2020 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>].</p><p>Изучение факторов патогенности коронавируса SARSCoV-2 показало, что в клетки человека он проникает через рецепторы к ангиотензин-превращающему ферменту 2-го типа (ACE2), который достаточно широко представлен в различных тканях: он экспрессируется в легких на уровне альвеол, кишечнике, гонадах, почках и т.д. [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Поэтому потенциально при новой коронавирусной инфекции могут поражаться не только дыхательные пути, но и другие ткани и органы [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. С диагностической точки зрения, вирус может обнаруживаться не только в биоматериале из дыхательных путей (назофарингеальные соскобы, БАЛ, мокрота), но и в других биологических жидкостях (фекалии, моча, кровь) [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Теоретически он может обнаруживаться в моче и в семенной жидкости у мужчин [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>].</p><p>В настоящее время специфическими методами диагностики новой коронавирусной инфекции SARS-CoV-2 являются молекулярно-генетические методы, в частности, в качестве референсного используется метод ПЦР в реальном времени с обратной транскрипцией вирусной РНК [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>]. Базисным тестовым набором для ПЦР диагностики новой коронавирусной инфекции является рекомендованная ВОЗ тест-система, в котором используются праймеры к генам SARS-CoV РНК зависимой РНК полимеразы (RdRP) и капсидного белка (E), то есть данная тест-систем основана на детекции специфической РНК последовательности двух компонентов вируса [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Это связано с тем, что диагностические ПЦР-тест-системы, основанные на выявлении специфической последовательности только одного компонента SARS-CoV-2 (E-гена), хоть и являются более чувствительными, чем основанные на выявлении RdRp, но при использовании такого набора может быть затруднена интерпретация результата из-за высокой зависимости качества ПЦР от сторонних факторов2. Также для ПЦР диагностики в реальном времени новой коронавирусной инфекции могут применяться тест-системы, которые содержат праймеры к двум локусам вирусного нуклеокапсида (N1 и N2) и гену человеческой РНКазы P [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>].</p><p>Из-за достаточно стремительного распространения нового коронавируса по миру особое значение приобретает максимально широкий охват данным молекулярно-генетическим тестированием населения различных стран для эффективного проведения противоэпидемических мероприятий и быстрое проведение тестирования [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>]. Метод ПЦР в реальном времени является достаточно долгим и ограничен применением только в стационарной, хорошо оборудованной лаборатории. Поэтому для ускорения молекулярно-генетической диагностики SARS-CoV-2 был предложен другой метод, основанный на петлевой изотермическиой амплификации с обратной транскрипцией вирусной РНК (метод LAMP) [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. В нем для детекции вирусной РНК используются 6 праймеров к генам orf1ab, S и N. Преимуществом данного метода является высокая скорость получения результата (до 30 мин.) и достаточно высокая чувствительность (80 копий/мл). Более высокая чувствительность метода LAMP может быть критически важна для выявления бессимптомных носителей SARS-CoV-2, а также пациентов в инкубационном периоде3. В настоящее время показано, что бессимптомные носители новой коронавируснойинфекции являются важнейшими участниками эпидемического процесса [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>]. Некоторые исследования показывают, что вирусная нагрузка и вирусовыделение у полностью бессимптомных носителей новой коронавирусной инфекции сходно с больными COVID19, у которых есть симптомы заболевания [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. Поэтому крайне важно оперативно выявлять таких индивидуумов методами молекулярной генетики [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>].</p><p>Цель исследования — провести оценку выявляемости короновирусной инфекции SARS-CoV-2 у бессимптомных индивидуумов Ростовской области молекулярно-генетическими методами ПЦР в реальном времени и изотермической амплификации.</p></sec><sec><title>Материалы и методы</title><p>В ПЦР-отделе лаборатории клинической патоморфологии и молекулярно-биологических исследований ГАУ РО Областной консультативно-диагностический центр было протестировано на SARS-CoV-2 22037 индивидуумов, которые на момент сдачи материала не имели клинически выраженных симптомов респираторного заболевания COVID-19. Среди общей выборки было обследовано 3090 человек, контактировавших с больными COVID-19 (группа «контактных»), 8109 медицинских работников и 3098 «контактных» медработников. В качестве биоматериала использовались назальный и фарингеальный соскобы, зонды с которыми помещались в пробирку типа Eppendorf с транспортной средой для увеличения вирусной нагрузки. Молекулярно-генетическое качественное исследование проводилось методом ПЦР в реальном времени с обратной транскрипцией в одной пробирке с использованием тест-систем «РеалБест РНК SARS-CoV-2» (ООО «Вектор бест», Новосибирск) (заявленная чувствительность — 1000 копий/мл) с использованием автоматического выделения вирусной ДНК на платформе KingFisher Flex (Thermo Fisher Scientific) набором «РеалБест УниМаг», тест-системы для выявления РНК коронавирусов SARS-CoV-2 и подобных SARS-CoV (ООО «ДНК-технология», Москва) c ручным выделением вирусной РНК (заявленная аналитическая чувствительность — 500 копий/мл, используются праймеры к специфической последовательности генов E и N РНК SARSCoV-2), а также методом изотермической амплификации с использованием тест-системы Изотерм SARS-CoV-2 РНК Скрин (ООО «Дженериум», резидент Сколково, Владимирская обл.) (заявленная аналитическая чувствительность — 1000 копий/мл). Критерии положительного результата анализа для каждой из тест-систем представлены в табл. 1. При анализе использовался один положительный и один отрицательный контрольный образец. 95 % образцов было проанализировано двумя указанными выше тест-системами, основанными на RT-PCR. Положительные образцы отправлялись для подтверждения результата в референсную лабораторию регионального ФГБУЗ. Полученные результаты анализировались в программе Statictica 6.0.</p><fig id="fig-1"><caption><p>Таблица / Table 1</p><p>Критерии положительного результата молекулярно-генетических тест-систем, использованных для специфической лабораторной диагностики инфекции SARS-CoV-2Criteria for positive results of molecular genetic test systems, used for specific laboratory diagnostics of infection SARS-CoV-2</p></caption><graphic xlink:href="mvjr-11-3-g001.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/mvjr/2020/3/8rvAG7RIpSz3y9ipATXYuCRfttAHPIgUde1B3jja.jpeg</uri></graphic></fig></sec><sec><title>Результаты</title><p>В табл. 2 представлены обобщенные результаты молекулярно-генетического тестирования бессимптомных индивидуумов на новую коронавирусную инфекцию с выделением ряда подгрупп тестируемых.</p><p>В табл. 3 представлен сравнительный анализ положительных и подтверждённых референсным ФБУЗ результатов молекулярно-генетического анализа на COVID-19, выполненных на платформе двух различных тест-систем, основанных на методе ПЦР в реальном времени с обратной транскрипцией вирусной РНК.</p><p>Таблица / Table 2</p><p>Сводная таблица результатов молекулярно-генетического тестирования бессимптомных пациентов на инфекцию SARS-CoV-2Summary table of molecular genetic testing asymptomatic patientsfor SARS-C0V-2 infection</p><p>Группа пациентов (% от общего числа)


Общее
кол-во


Кол-во положи­тельных резуль­татов


Кол-во потверж- дённых референсным ФГБУЗ


Доля положити- тельного результатов (%)


Доля ложно­положительного результатов (%)




Всего (100 %)


22037


297


149


0,68


49,8




«Контактные» (14 %)


3090


172


78


2,52


54,7




Медицинские работники (36,8 %)


8109


38


23


0,28


39,4




«Контактные» медицин­ские работники (14 %)


3098


38


24


0,77


36,8



</p><p>Таблица / Table 3</p><p>Сравнение положительных и подтвержденных рефересным ФБУЗ результатов молекулярно-генетического тестирования на SARS-C.V-2, выполненных на платформе двух тест-систем методом RT-PCR Comparison ofpositive and verified by reference centre molecular genetics results of SARS-CoV-2, made on the platform of two test systems by RT-PCR method</p><p>Тест-система


Количество
положительных
результатов


Количество под­тверждённых ФБУЗ результатов


% подтверждён­ных результатов от общего кол-ва тестов


% ложноположи­тельных результатов




SARS-CoV-2 / SARS-CoV («ДНК-технология») (ручное выделение)


126


68 (до 18.05)


0,31


46,0




«РеалБест РНК SARS-CoV-2» (автоматическое выделение)


171


81 (до 18.05)


0,37


52,6



</p></sec><sec><title>Обсуждение</title><p>Согласно результатам данного исследования, в общей когорте бессимптомных индивидуумов количество выявленных случаев инфекции SARS-CoV-2 составляет всего 0.68 %. Среди общей популяции на порядок выше величина инфицирования среди лиц, которые находились в контакте с заболевшими COVID-19 (2,52 %). Среди медицинских работников уровень инфицируемости составляет 0,28 %, что ниже средних значений, но среди медиков, которые контактируют с больными и инфицированными новой коронавирусной инфекцией, уровень выявленных случаев SARSCoV-2 несколько выше (0,77 %), чем среднее значение.</p><p>Таким образом, в выборке лиц, не имеющих симптомов новой коронавирусной инфекции, в том числе и из групп риска, наблюдается достаточно низкое значение положительных результатов молекулярно-генетической диагностики на SARS-CoV-2. Причин этому может быть несколько. Первой из них является действительное отсутствие инфицирования у таких лиц. Видно, что в группе «контактных» индивидуумов выявляемость вируса на порядок выше,чем общей группе, что подтверждает нахождение такихлюдей в группе риска. Но даже в этой подгруппе процент положительных результатов не такой высокий, как можнобыло прогнозировать. Известно, что лабораторного коронавирусной инфекции должны применяться только длярешения определённых диагностических задач [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Такжеважным является специфичность и чувствительность тест-системы. Если принять за репликации SARS-CoV-2 в зависимости от стадии заболевания и тяжести его протекания ПЦР-тесты с низкой чувствительностью подойдут для тестирования симптоматических пациентов, но у асимптомных индивидуумов могут дать ложноотрицательный результат. Как показано выше, нижняя граница чувствительности использованы диагностических тест-систем составляет 500 копий/мл, что может быть недостаточным для выявления бессимптомных носителей, у которых может быть уровень репликации вируса [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Ряд авторов указывает на то, что для эффективного скрининга носителей SARS-CoV-2 или для выявления лиц в инкубационном периоде существующие молекулярно-генетические тест-достаточно невысокую диагностическую значимость [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. И если для выявления вирусной инфекции у пациентов с симптомами COVID-19 метод RT-PCR является референсным и весьма эффективным, то для выявления асимптомного инфицирования его возможности сильно ограничены. Следует отметить, что и иммунологические методы лабораторной бессимптомного носительства новой коронавирусной инфекции также мало подходят для решения данной диагностической задачи, так как основная цель таких тестов — эпидемиологическое наблюдение и индивидуального и коллективного иммунитета к SARS-CoV-2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>].</p><p>Что касательно высокого процента ложно-положительны результатов, которые показаны в настоящем исследовании, то одним из объяснений этого может быть ложное срабатыванием молекулярно-генетических тест-систем на другие виды сезонных коронавирусов, которые уже давно циркулируют в человеческой популяции. В настоящее время четкие причины высокого процента результатов такого рода выявить сложно, учитывая то, что в коммерческих тест-системах дизайн использованных праймеров в открытой печати не публикуется.</p></sec><sec><title>Заключение</title><p>Несмотря на активное развитие в настоящее время методов специфической лабораторной диагностики новой коронавирусной инфекции остаётся немало сложностей для выявления бессимтомных носителей SARS-CoV-2. До конца не изучена стадийность репликации и вирусовыделения SARS-CoV-2 при бессимптомном носительстве, что также усложняет точное выявление новой коронавирусной инфекции. Поэтому на данный момент необходима разработка тестов для выявления бессимптомных SARS-CoV, которые базировались бы не только свойствах этиологического агента, но и на особенностях патогенеза данной инфекции, что должно повысить их чувствительность, специфичность и диагностическую значимость. Примером таких тестов может служить созданная американским учеными лабораторная диагностическая тест-система, основанная на технологии генетического редактирования CRISPR-Cas 12 [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>]. Разработка таких тестов может сыграть решающую роль в выявлении асимптомных носителей заболевания и позволит уточнить особенности его этиопатогенеза и в конечном итоге взять под полный контроль развитие эпидемического процесса [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>].</p><p>Финансирование. За счёт ГАУ РО Областной консультативно-диагностический центр.Financing. At the cost Regional consulting and diagnostic center, Rostov-on-Don.Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствииконфликта интересов.Conflict of interest. Authors declares no conflict of interest.</p><p> </p><p>1. Center for Systems Science and Engineering (2020) CoronavirusCOVID-19 global cases. Johns Hopkins University. Accessed 3 Apr 2020. https://coronavirus.jhu.edu/map.html
2. Centers for Disease Control and Pevention. Interim Guidelines for Collecting, Handling, and Testing Clinical Specimens from Persons for Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-nCoV/lab/guidelines-clinical-specimens%20html
3. FIND. COVID-19 Diagnostics Resource Centre. http://www.finddx.org/covid-19/
</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Paoli D, Pallotti F, Colangelo S, Basilico F, Mazzuti L, Turriziani O, et al. Study of SARS-CoV-2 in semen and urine samples of a volunteer with positive naso-pharyngeal swab. // J Endocrinol Invest. – 2020. – V.23. – P.1–4. https://doi.org/10.1007/s40618-020-01261-1</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Paoli D, Pallotti F, Colangelo S, Basilico F, Mazzuti L, et al. Study of SARS-CoV-2 in semen and urine samples of a volunteer with positive naso-pharyngeal swab. J Endocrinol Invest. 2020;23:1– 4. https://doi.org/10.1007/s40618-020-01261-1</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ashour HM, Elkhatib WF, Rahman MM, Elshabrawy HA. Insights into the Recent 2019 Novel Coronavirus (SARSCoV-2) in Light of Past Human Coronavirus Outbreaks. // Pathogens. – 2020. – V.9(3). – P.186. https://doi.org/10.3390/pathogens9030186</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ashour HM, Elkhatib WF, Rahman MM, Elshabrawy HA. Insights into the Recent 2019 Novel Coronavirus (SARS-CoV-2) in Light of Past Human Coronavirus Outbreaks. Pathogens. 2020;9(3):186. https://doi.org/10.3390/pathogens9030186.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cascella M, Rajnik M, Cuomo A, Dulebohn SC, Di Napoli R. Features, Evaluation, and Treatment of Coronavirus (COVID-19) [Updated 2020 Aug 10]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2020 Jan-. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK554776/</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cascella M, Rajnik M, Cuomo A, Dulebohn SC, Di Napoli R. Features, Evaluation, and Treatment of Coronavirus (COVID-19) [Updated 2020 Aug 10]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2020 Jan-. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK554776/</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chen Y, Guo Y, Pan Y, Zhao ZJ. Structure analysis of the receptor binding of 2019-nCoV. // Biochemical and Biophysical Research Communications. – 2020. – V.525, Is.1. – P. 135-140. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2020.02.071.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chen Y, Guo Y, Pan Y, Zhao ZJ. Structure analysis of the receptor binding of 2019-nCoV. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2020;525(1):135-140. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2020.02.071.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Corman VM, Landt O, Kaiser M, Molenkamp R, Meijer A, Chu DK, et al. Detection of 2019 novel coronavirus (2019- nCoV) by real-time RT-PCR. // Euro Surveill. – 2020. – V.25(3). -2000045. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2020.25.3.2000045.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Corman VM, Landt O, Kaiser M, Molenkamp R, Meijer A, Chu DK, et al. Detection of 2019 novel coronavirus (2019-nCoV) by real-time RT-PCR. Euro Surveill. 2020;25(3):2000045. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2020.25.3.2000045.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Xie C, Jiang L, Huang G, Pu H, Gong B, Lin H, et al. Comparison of different samples for 2019 novel coronavirus detection by nucleic acid amplification tests. // Int J Infect Dis. – 2020. – V.93. – P.264-267. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.02.050.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Xie C, Jiang L, Huang G, Pu H, Gong B, et al. Comparison of different samples for 2019 novel coronavirus detection by nucleic acid amplification tests. Int J Infect Dis. 2020;93:264- 267. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.02.050.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Peng X, Xu X, Li Y, Cheng L, Zhou X, Ren B. Transmission routes of 2019-nCoV and controls in dental practice. // International Journal of Oral Science. – 2020. – V.12(1). https://doi.org/10.1038/s41368-020-0075-9</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Peng X, Xu X, Li Y, Cheng L, Zhou X, Ren B. Transmission routes of 2019-nCoV and controls in dental practice. International Journal of Oral Science. 2020;12(1). https://doi.org/10.1038/s41368-020-0075-9</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cheng MP, Papenburg J, Desjardins M, Kanjilal S, Quach C, Libman M, et al. Diagnostic Testing for Severe Acute Respiratory Syndrome–Related Coronavirus-2. A Narrative Review. // Ann Intern Med. – 2020. – V. 172(11). – P. 726-734. https://doi.org/10.7326/M20-1301.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cheng MP, Papenburg J, Desjardins M, Kanjilal S, Quach C, Libman M, et al. Diagnostic Testing for Severe Acute Respiratory Syndrome-Related Coronavirus 2: A Narrative Review. Ann Intern Med. 2020;172(11):726-734. https://doi.org/10.7326/M20-1301.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wang W, Xu Y, Gao R, Lu R, Han K, et al. Detection of SARSCoV-2 in Different Types of Clinical Specimens. // JAMA. – 2020. – V. 323(18). – P.1843–4. https://doi.org/10.1001/jama.2020.3786.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wang W, Xu Y, Gao R, Lu R, Han K, et al. Detection of SARSCoV-2 in Different Types of Clinical Specimens. JAMA. 2020;323(18):1843–4. https://doi.org/10.1001/jama.2020.3786.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Huang WE, Lim B, Hsu C, Xiong D, Wu W, Yu Y, et al. RTLAMP for rapid diagnosis of coronavirus SARS‐CoV‐2. // Microbial Biotechnology. – 2020. – V.13(4). – P. 950-961. https://doi.org/10.1111/1751-7915.13586</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Huang WE, Lim B, Hsu C, Xiong D, Wu W, Yu Y, et al. RTLAMP for rapid diagnosis of coronavirus SARS‐CoV‐2. Microbial Biotechnology. 2020;13(4):950-961. https://doi.org/10.1111/1751-7915.13586</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lai CC, Liu YH, Wang CY, Wang YH, Hsueh SC, et al. Asymptomatic carrier state, acute respiratory disease, and pneumonia due to severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2): Facts and myths. // J Microbiol Immunol Infect. – 2020. – V.53(3). – P.404-412. https://doi.org/10.1016/j.jmii.2020.02.012</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lai CC, Liu YH, Wang CY, Wang YH, Hsueh SC, et al. Asymptomatic carrier state, acute respiratory disease, and pneumonia due to severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2): Facts and myths. J Microbiol Immunol Infect. 2020;53(3):404-412. https://doi.org/10.1016/j.jmii.2020.02.012</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zou L, Ruan F, Huang M, Liang L, Huang H, et al. SARSCoV-2 Viral Load in Upper Respiratory Specimens of Infected Patients. N // Engl J Med. – 2020. – V. 382(12). – P.1177- 1179. https://doi.org/10.1056/NEJMc2001737.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zou L, Ruan F, Huang M, Liang L, Huang H, et al. SARSCoV-2 Viral Load in Upper Respiratory Specimens of Infected Patients. N Engl J Med. 2020;382(12):1177-1179. https://doi.org/10.1056/NEJMc2001737.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lippi G, Sanchis-Gomar F, Henry BM. Coronavirus disease 2019 (COVID-19): the portrait of a perfect storm. // Annals of Translational Medicine. – 2020. – V.8(7). – P.497–497. https://doi.org/10.21037/atm.2020.03.157</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lippi G, Sanchis-Gomar F, Henry BM. Coronavirus disease 2019 (COVID-19): the portrait of a perfect storm. Annals of Translational Medicine. 2020;8(7):497–497. https://doi.org/10.21037/atm.2020.03.157</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guo L, Ren L, Yang S, Xiao M, Chang D, et al. Profiling Early Humoral Response to Diagnose Novel Coronavirus Disease (COVID-19). // Clin Infect Dis. – 2020. – V. 71(15). – P. 778- 785. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa310.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guo L, Ren L, Yang S, Xiao M, Chang D, et al. Profiling Early Humoral Response to Diagnose Novel Coronavirus Disease (COVID-19). Clin Infect Dis. 2020;71(15):778-785. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa310.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, et al. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. // Nat Biotechnol. – 2020. – V. 38(7). – P. 870-874. https://doi.org/10.1038/s41587-020-0513-4.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Broughton JP, Deng X, Yu G, Fasching CL, Servellita V, Singh J, et al. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2. Nat Biotechnol. 2020;38(7):870-874. https://doi.org/10.1038/s41587-020-0513-4.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Бурцев Д.В., Аванян Н.Л., Кипайкин В.А., Скрипец Н.В. О системе эпидемиологической безопасности в областном консультативно-диагностическом центре. // Инфекция и иммунитет. - 2017. - № S. - С. 113. eLIBRARY ID: 35379622</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Burtsev D.V., Avanjan N.L., Kipajkin V.A., Skripec N.V. O sisteme jepidemiologicheskoj bezopasnosti v oblastnom konsul'tativno-diagnosticheskom centre. Infekcija i immunitet. 2017;S:113 (In Russ). eLIBRARY ID: 35379622</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
